Нормальная физиология: учебное пособие часть 1

нормальная
физиология
Учебное пособие
Часть 1
ПЕРМЬ
2025
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение
высшего образования «Пермский государственный медицинский университет
имени академика Е.А. Вагнера»
Министерства здравоохранения Российской Федерации
НОРМАЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
Утверждено центральным координационным методическим
советом ФГБОУ ВО ПГМУ им. академика Е.А. Вагнера
Минздрава России в качестве учебно-методического пособия
В двух частях
Часть 1
Пермь
2025
1
УДК 612(075.8)
ББК 28.903я83Н83
Н 83
Авторы-составители:
Булатова И.А., Кадырова Е.В., Тютюнщикова В.Д.,
Кононова М.Л., Савкин В.В., Кривцов А.В.,
Сагитова Т.Г., Чистякова И.В.
Рецензенты:
д-р мед. наук, зав. кафедрой нормальной физиологии
Ижевской государственной медицинской академии
Минздрава России Н.Н. Васильева;
д-р мед. наук, зав. кафедрой физиологии Пермской государственной
фармацевтической академии Минздрава России И.П. Рудакова.
Н 83
Нормальная физиология : учеб.-метод. пособие : в 2 ч. / И.А. Булатова,
Е.В. Кадырова, В.Д. Тютюнщикова [и др.]; под ред. И.А. Булатовой; ФГБОУ
ВО ПГМУ им. академика Е.А. Вагнера Минздрава России. – 4-е изд.,
перераб. – Ч. 1. – Пермь, 2025. – 98 с.
ISBN 978-5-7812-0764-0
Часть 1. – 98 с. – ISBN 978-5-7812-0765-7
Представлены практические работы по общей физиологии возбудимых
тканей, центральной нервной системы, крови и системы кровообращения, систем
дыхания, пищеварения, выделения и терморегуляции, практикум по анализаторам и
интегративной деятельности организма. Наряду с традиционными видами практических работ, в пособие включены методы функционального исследования физиологических систем, используемые в медицине, и экспериментальные работы на основе компьютерного моделирования. Для контроля усвоения материала даны тестовые задания и вопросы. Составлено в соответствии с планом практических занятий
по нормальной физиологии.
Предназначено для студентов лечебного, педиатрического и медико-профилактического факультетов медицинских вузов.
Печатается по решению ЦКМС ФГБОУ ВО ПГМУ
им. академика Е.А. Вагнера Минздрава России.
Протокол № 3 от 21.05.2025 г.
УДК 612(075.8)
ББК 28.903я83Н83
ISBN 978-5-7812-0765-7 (Ч. 1)
ISBN 978-5-7812-0764-0 (общ.)
2
© ФГБОУ ВО ПГМУ им. академика
Е.А. Вагнера Минздрава России, 2025
ОГЛАВЛЕНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ ..................................................................... 5
ПРАВИЛА РАБОТЫ СТУДЕНТОВ НА КАФЕДРЕ ............................ 7
1. ОБЩАЯ ФИЗИОЛОГИЯ ВОЗБУДИМЫХ ТКАНЕЙ ...................... 9
1.1. Вводное занятие .......................................................................... 9
1.2. Биоэлектрические явления в организме ................................. 11
1.3. Физиология мышц .................................................................... 15
1.4. Физиология нейрона и синапса ............................................... 18
2. ФИЗИОЛОГИЯ ЦЕНТРАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ .......... 19
2.1. Общая характеристика функций ЦНС .................................... 19
2.2. Торможение в ЦНС. Принципы координации
рефлекторных процессов ........................................................ 23
2.3. Двигательная система. Роль отделов ЦНС
в регуляции тонуса мышц ....................................................... 27
2.4. Частная физиология отделов мозга (семинар) ....................... 30
3. НЕРВНАЯ И ГУМОРАЛЬНАЯ РЕГУЛЯЦИЯ
ВИСЦЕРАЛЬНЫХ ФУНКЦИЙ ...................................................... 32
3.1. Физиология и регуляция активности вегетативной
(автономной) нервной системы .............................................. 32
3.2. Гуморальная и нейрогуморальная регуляция
функций (семинар)................................................................... 36
4. ФИЗИОЛОГИЯ КРОВИ ................................................................... 38
4.1. Гомеостатическая функция крови ........................................... 38
4.2. Транспортная функция крови .................................................. 40
4.3. Физиология иммунитета .......................................................... 48
4.4. Физиология гемостаза .............................................................. 52
5. ФИЗИОЛОГИЯ ВЫДЕЛЕНИЯ ....................................................... 57
6. ДЫХАНИЕ ........................................................................................ 61
6.1. Механизмы газообмена ............................................................ 61
6.2. Регуляция дыхания. Функциональная система дыхания ...... 66
3
ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ ....................................................................... 69
ОТВЕТЫ НА ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ ............................................... 84
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ ..................................................................... 85
ПРИЛОЖЕНИЕ 1. ПЕРЕЧЕНЬ ПРАКТИЧЕСКИХ УМЕНИЙ,
КОТОРЫМИ ДОЛЖЕН ОВЛАДЕТЬ СТУДЕНТ В ПРОЦЕССЕ
ПРАКТИЧЕСКИХ (ЛАБОРАТОРНЫХ) ЗАНЯТИЙ
В ОСЕННЕМ СЕМЕСТРЕ ................................................................... 87
ПРИЛОЖЕНИЕ 2. ТЕРМИНЫ И КОНСТАНТЫ .............................. 88
4
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
АД – артериальное давление
АД диаст. – артериальное давление диастолическое
АД пульс. – артериальное давление пульсовое
АД сист. – артериальное давление систолическое
АД ср. – артериальное давление среднее
ВИК – вегетативный индекс Кердо
ВНД – высшая нервная деятельность
ВНС – вегетативная нервная система
ДЖЕЛ – должная жизненная емкость легких
ДО – дыхательный объем
ЖЕЛ – жизненная емкость легких
ИМТ – индекс массы тела (индекс Кетле)
Индекс ОТ/ОБ – индекс окружность талии/окружность бедер
ИОС – индекс относительной силы
КП – коэффициент памяти
ЛО – локальный ответ
МАВ – минутная альвеолярная вентиляция
МВЛ – максимальная вентиляция легких
МОК – минутный объем крови
МЦР – микроциркуляторное русло
ОО – основной обмен
ОС – относительная сила
ОФВ1 – объем форсированного выдоха за первую секунду
ПД – потенциал действия
РОвд – резервный объем вдоха
РОвыд – резервный объем выдоха
СГЭ – содержание гемоглобина в эритроците
СДДП – специфически динамическое действие пищи
СО – систолический объем
СОЭ – скорость оседания эритроцитов
5
СРПВ – скорость распространения пульсовой волны
ФЖЕЛ – форсированная жизненная емкость легких
ЦНС – центральная нервная система
ЦП – цветовой показатель
ЧД – частота дыхания
ЧСС – частота сердечных сокращений
ЭКГ – электрокардиограмма
ЭМГ – электромиограмма
ЭЭГ – электроэнцефалограмма
∆ЧСС – прирост частоты сердечных сокращений
6
ПРАВИЛА РАБОТЫ СТУДЕНТОВ НА КАФЕДРЕ
1. Студент приходит на занятия в белом халате и сменной обуви.
2. Каждый студент обязан соблюдать правила техники безопасности при выполнении практических работ по нормальной физиологии. Инструктаж по технике безопасности проводится на первом
занятии.
3. На первом занятии выбирается дежурный на весь учебный
год. Он получает в лаборантской все необходимое для выполнения
практических работ: методички, оборудование, инструменты, растворы. В конце занятия дежурный стирает с доски, закрывает окна и
относит в лаборантскую оборудование.
4. Студенты должны быть подготовлены к занятию. Информация об очередной теме занятия – календарно-тематический план ‒
вывешивается на стенде объявлений для студентов. Для подготовки
к занятиям рекомендуется использовать:
‒ лекции по нормальной физиологии;
‒ учебно-методическое пособие к практическим занятиям по
нормальной физиологии;
‒ Курс лекций по нормальной физиологии для студентов медицинского вуза: в 2 ч. / В.Г. Афанасьев, Е.Г. Офрихтер, М.Д. Берг,
В.Д. Тютюнщикова, В.В. Савкин, Е.В. Кадырова, М.Л. Кононова;
Перм. гос. мед. акад. им. академика Е.А. Вагнера. ‒ Изд. 2-е, перераб.
Пермь, 2002. – 348 с. Ч. 1. – 174 с. Ч. 2. – 175 с.;
‒ учебники (см. список литературы в конце пособия).
5. На практических занятиях знания студентов преподаватель
контролирует по теоретическим вопросам, методикам проведения
практических работ, правильности выводов, сделанных по результатам практических работ. На семинарских занятиях оцениваются знания по теоретическим вопросам курса нормальной физиологии, заслушиваются реферативные доклады студентов и презентации.
В конце каждой темы проводится итоговый контроль.
7
6. После выполнения практических работ на занятии оформляется протокол каждой работы в тетради для протоколов практических работ.
Форма протокола следующая:
‒ Раздел физиологии.
‒ Тема занятия.
‒ Работа № … Название работы.
‒ Для работы необходимо: приборы, инструменты, объект исследования и т.д.
‒ Методика работы. Кратко описывается ход работы. Можно
привести схему установки.
‒ Результаты. Приводятся количественные и качественные показатели результатов исследования, рисунки и т.д.
‒ Выводы. Даются обоснования, объяснения полученных результатов.
Каждый протокол в конце занятия подписывает преподаватель.
8. В конце курса занятий в тетради для протоколов оформляется паспорт здоровья студента, в который вносятся данные, полученные в результате выполнения практических работ по всем разделам физиологии в течение учебного года.
8
1. ОБЩАЯ ФИЗИОЛОГИЯ ВОЗБУДИМЫХ ТКАНЕЙ
1.1. Вводное занятие
Цель. Знакомство с историей кафедры, правилами техники
безопасности при работе на кафедре. Введение в предмет «Физиология», знакомство с основами деятельности организма, понятием
«функциональное состояние» организма.
Теоретические вопросы
1. Сведения о кафедре.
2. Объект и процессы, изучаемые физиологией. Методы изучения.
3. Связь физиологии с другими науками.
4. Функциональное состояние организма, его изменение в покое, при деятельности и после нее.
5. Физиологические свойства как основа деятельного состояния возбудимых тканей.
Понятие о возбудимых тканях. Характеристика физиологических свойств: возбудимости, проводимости, сократимости, автоматии. Количественная оценка физиологических свойств.
Практические работы
1. Исследовать показатели сердечно-сосудистой системы в покое,
при деятельности и после нее (в восстановительный период).
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Исследовать показатели сердечно-сосудистой системы в покое, при деятельности и после нее (в восстановительный
период).
Для работы необходимо: хронометр.
Методика работы. Выбрать двух испытуемых разного пола,
но соответствующих друг другу по возрасту, росту, массе тела,
и двух одного пола, но с различной степенью физической
9
тренированности. Подсчитать частоту сердечных сокращений (ЧСС)
за 15 с в покое, сразу после 20 приседаний за 30 с (проба Мартине) и
через 3 и 5 мин после прекращения нагрузки. Полученные данные
занести в таблицу (табл. 1).
Результаты
Таблица 1
Показатели сердечно-сосудистой системы у студентов,
имеющих разный уровень функционального
состояния организма
Испытуемый
В покое
ЧСС, уд./мин
Условия регистрации
В восстановительный период
Сразу
после нагрузки
через 3 мин
через 5 мин
Мужчина
Женщина
Тренированный
Нетренированный
Рассчитать изменения ЧСС в процентном выражении сразу после нагрузки и в восстановительный период по отношению к величине показателей в покое.
Выводы:
1. Сравнить величину ЧСС у мужчин и женщин в покое, ее изменения при нагрузке и в восстановительный период, скорость восстановления ЧСС.
2. Сравнить величину ЧСС у тренированного и нетренированного человека в покое, ее изменения при нагрузке и в восстановительный период, скорость восстановления ЧСС.
3. Объяснить различия наблюдаемых изменений ЧСС у мужчин и женщин, тренированных и нетренированных с позиций удовлетворения потребностей организма при работе. Как идет восстановление функций после работы у лиц с разным функциональным
состоянием?
10
1.2. Биоэлектрические явления в организме
Цель. Изучить механизмы возникновения потенциала покоя
и потенциала действия.
Теоретические вопросы
1. Потенциал покоя: ионное происхождение, его величина в
различных тканях, колебания. Пассивный транспорт ионов. Критический уровень мембранного потенциала. Зависимость возбудимости от величин потенциала покоя и критического уровня мембранного потенциала.
2. Поддержание ионных градиентов Nа+ и К+ внутри и снаружи
клетки и величины потенциала покоя. Активный транспорт ионов.
3. Ответ возбудимых тканей на подпороговые раздражения.
Локальный ответ, его свойства.
4. Ответ возбудимых тканей на пороговые и сверхпороговые раздражения. Потенциал действия, его фазы, ионный механизм, графическое изображение, форма потенциалов действия в различных тканях.
5. Изменение возбудимости мембраны в момент генерации потенциала действия.
Практические работы
1. Регистрация электрической активности сердца в стандартных биполярных отведениях.
2. Условия возникновения потенциалов действия в мышечных
волокнах (демонстрационная работа с применением компьютерного
моделирования физиологических процессов).
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Регистрация электрической активности сердца
в стандартных биполярных отведениях.
Для работы необходимо: электрокардиограф, электроды, марлевые салфетки, электродный гель, кушетка.
11
Методика работы. Исследования проводятся на человеке. Испытуемого укладывают на кушетку. На конечности накладывают
электроды по следующей схеме: красный – на правую руку, желтый – на левую руку, зеленый – на левую ногу, черный заземляющий – на правую ногу. На кардиографе установить скорость лентопротяжки 25 мм/с. Записать калибровочный сигнал при усилении
1 мВ =10 мм. Записать ЭКГ во втором стандартном отведении.
Результаты. Наклеить кусочек пленки в тетрадь, зарисовать
ЭКГ, обозначить ее элементы на пленке и схеме.
Выводы:
1. Дать определение методу электрокардиографии и электрокардиограмме.
2. Указать условия, необходимые для качественной записи ЭКГ.
3. Объяснить причину возникновения биопотенциалов в сердце.
Работа 2. Условия возникновения потенциалов действия в мышечных волокнах (демонстрационная работа с применением компьютерного моделирования физиологических процессов).
Для работы необходимо: компьютер, программа на языке
Turbo Раsсаl V 7.
Методика работы:
1. Курсор навести на ярлык «Работы in silico». Открыть меню.
2. Дважды щелкнуть по Phiz.#2Bat. В верхней части рабочего
стола появятся схематически изображенные три мышечных волокна, у
каждого указан порог раздражения: 15, 20 и 25 мВ. Волокна расположены на раздражающих электродах, соединенных со стимулятором. Отводящие электроды соединены с осциллографом.
В средней части рабочего стола представлены показания осциллографа, возникающие при различных раздражениях. В левой части – ответы каждого мышечного волокна на раздражения. В правой
части – суммарный электрический ответ в виде суммы потенциалов
действия.
12
В нижней части экрана указано напряжение раздражающего
стимула. При включении раздражения загорается табло используемого напряжения.
3. Нажать на клавиатуре цифру «1», загорается сигнал раздражения 10 мВ, оно подпороговое для всех трех волокон. Отметить
наличие и величину локальных ответов (ЛО) в волокнах и отсутствие
суммарного потенциала действия (ПД).
4. Нажать клавишу с цифрой «2», включается раздражение
напряжением 15 мВ. Возбуждается волокно с порогом 15 мВ (окрашивается в красный цвет). В нем ЛО увеличивается до Ек (Е критической), и возникает ПД. В остальных волокнах увеличилась амплитуда ЛО. Одновременно регистрируется суммарный ПД.
5. Нажать на клавишу с цифрой «3», включается раздражение
напряжением 20 мВ. Возбуждаются два волокна. Причем амплитуда
ПД в первом волокне не меняется в ответ на сверхпороговое раздражение, во втором ЛО достиг Ек, и возник ПД. В третьем волокне амплитуда ЛО увеличилась, но не достигла Ек (поэтому нет ПД). Суммарный электрический ответ увеличился.
6. Нажать клавишу с цифрой «4», включается раздражение
25 мВ. Возбудились все волокна (яркое окрашивание). ПД в первом и
втором волокне не изменились по амплитуде. В третьем ЛО достиг Ек,
и возник ПД. Суммарный ПД увеличился по амплитуде.
7. Нажать клавишу с цифрой «5», включается раздражение
напряжением 30 мВ. При этом амплитуда ПД в каждом волокне
и суммарного не изменились.
Результаты:
1. Наблюдать реакцию мышечных волокон на каждое
раздражение.
2. Наблюдать зависимость амплитуды ПД волокон от силы раздражения.
Полученные результаты представить в виде таблицы (табл. 2, 3).
Отметить характер ответа мышечного волокна на раздражение, заштриховав соответствующую ячейку таблицы, в которой указана
возбудимость волокна.
13
Таблица 2
Ответ мышечного волокна
на подпороговые и пороговые раздражения
Напряжение
раздражения, мВ
10
15
20
25
30
Характер
электрического
ответа
ЛО
ПД
ЛО
ПД
ЛО
ПД
ЛО
ПД
ЛО
ПД
Мышечное волокно; величина порога
раздражения (возбудимость), мВ
15
20
25
Таблица 3
Изменение амплитуды суммарного потенциала
действия мышечных волокон в зависимости
от величины раздражения
Напряжение
раздражения, мВ
Амплитуда суммарного ПД мышечных волокон
при раздражении
Наличие ПД
Увеличивается
Не изменяется
10
15
20
25
30
Выводы:
1. Описать электрическую реакцию мышечных волокон на подпороговые, пороговые и сверхпороговые раздражения. Объяснить
суть закона «всё или ничего».
14
2. Описать зависимость амплитуды суммарного потенциала действия группы мышечных волокон от силы раздражения, в отличие от
ПД одиночного волокна.
1.3. Физиология мышц
Цель. Изучить механизмы сократительной деятельности мышц.
Теоретические вопросы
1. Раздражители гладких и поперечно-полосатых мышц (изменение геометрии, нервные импульсы, химические и биологически активные вещества).
2. Классификация видов и режимов мышечных сокращений
(тонические, ритмические, изометрические, изотонические, ауксотонические).
3. Характеристика одиночного мышечного сокращения.
4. Суммация мышечных сокращений как основа тетанусов.
5. Сокращения скелетных мышц в условиях естественной активности. Работа моторных единиц.
6. Механизм сокращения и расслабления скелетных мышц.
Физиологическая характеристика мышечного аппарата (Т-система,
сократительные и модуляторные белки; энергообеспечение сокращения). Схема сокращения и расслабления мышц.
7. Работа мышц. Зависимость работы от нагрузки.
8. Физиологические особенности гладких мышц.
Практические работы
1. Запись и анализ электромиограммы мышц предплечья.
2. Анализ электромиограммы, записанной при различных
условиях мышечной активности.
3. Динамометрия. Расчет индекса относительной силы и определение уровня физического развития (здоровья) по Г.Д. Апанасенко
(1988).
15
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Запись и анализ электромиограммы (ЭМГ) мышц
предплечья.
Для работы необходимо: электрокардиограф, электроды, гантели массой 2 и 3 кг.
Методика работы. Красный и желтый электроды наложить на
мышцы предплечья одной руки так, чтобы они не соприкасались
друг с другом. Рука находится в полусогнутом положении, не касаясь
туловища. Заземляющий электрод расположить на правой ноге или
другой руке. Коммутатор электрокардиографа поставить в положение «1 отведение». Записать электромиограмму при расслабленном
состоянии мышц предплечья и при удержании груза массой 2 и 3 кг.
Продолжительность каждой записи 10–15 с. Скорость лентопротяжки установить 50 мм/ с.
Результаты. Вклеить кусочки ЭМГ в тетрадь, рассчитать амплитуду и частоту зубцов на электромиограмме, данные занести
в таблицу (табл. 4).
Таблица 4
Импульсная активность мышц предплечья
при различной величине удерживаемого груза
Величина удерживаемого
груза, кг
Контроль (без нагрузки)
2
3
Суммарная амплитуда
импульсной активности, мм
Количество
импульсов за 1 с, Гц
Выводы:
1. При каких условиях возникает электрическая активность
скелетных мышц?
2. Как зависит частота и амплитуда ЭМГ от развиваемого усилия? О чем свидетельствуют изменение частоты ЭМГ, увеличение
амплитуды ЭМГ?
16
3. Какова роль потенциала действия в мышечном сокращении?
4. Значение миографии в физиологической и клинической практике.
Работа 2. Анализ электромиограммы, записанной при различных условиях мышечной активности.
Для работы необходимо: планшеты с электромиограммами.
Методика работы. Оценить характер электромиограмм (по
частоте и амплитуде) при различных условиях регистрации, обозначенных на планшете.
Результаты. Описать увиденные результаты.
Выводы:
1. Почему изменяются амплитуда и частота ЭМГ икроножной
мышцы при длительном стоянии?
2. Как изменяется электрическая активность мышц при развитии утомления?
Работа 3. Динамометрия. Расчет индекса относительной силы
и определение уровня физического развития (здоровья) по Г.Д. Апанасенко (1988).
Для работы необходимо: кистевой динамометр.
Методика работы. Определяем силу мышц правой и левой кисти.
По наибольшей силе рассчитываем индекс относительной силы (ИОС).
ИОС 
Динамометрия  наибольшая, кг 
Масса тела  кг 
100%.
По величине ИОС оцениваем уровень физического здоровья
(табл. 5).
Результаты. Записать значения силы правой и левой кисти, массы
тела, рассчитать ИОС, сравнить его значение с данными таблицы.
Выводы:
1. Оценить свое физическое развитие.
2. Сделать рекомендации по результатам оценки физического
здоровья.
17
Таблица 5
Оценка уровня физического здоровья
(по Г.Л. Апанасенко, 1988 г.)
Индекс
относительной
силы
Женщины
Мужчины
Уровень физического развития (здоровья), %
Ниже
Выше
Низкий
Средний
Высокий
среднего
среднего
40 и меньше
41–50
51–55
56–60
61 и больше
60 и меньше
61–65
66–70
71–80
81 и больше
1.4. Физиология нейрона и синапса
Цель. Изучить механизмы синаптической передачи.
Теоретические вопросы
1. Виды нейронов. Строение нейрона. Функции нейрона. Законы проведения возбуждения по нервам.
2. Виды межклеточных контактов. Межклеточная передача информации: электрическая и химическая.
3. Синапс, его элементы.
4. Классификация медиаторов и хеморецепторов в синапсах
(нервно-мышечных, вегетативных, центральных).
5. Медиаторная теория передачи возбуждения в синапсе. Секреция медиатора, роль ионов кальция.
6. Биоэлектрические явления в синапсе, механизм формирования импульсного ответа.
7. Физиологические свойства синапсов.
8. Понятие о возбуждающих и тормозящих синапсах.
9. Модуляция синаптической передачи: пресинаптическая,
постсинаптическая.
18
2. ФИЗИОЛОГИЯ
ЦЕНТРАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ
2.1. Общая характеристика функций ЦНС
Цель. Формирование представлений об основном механизме
деятельности центральной нервной системы – рефлексе. Изучение
его структурно-функциональных основ (рефлекторная дуга, рефлекторное кольцо, функциональная система). Овладеть практическими
навыками исследования рефлекторной деятельности ЦНС.
Теоретические вопросы
1. Рефлекс – основной механизм приспособительного реагирования организма на изменения условий внешней и внутренней среды
(Р. Декарт, Г. Прохазка, Ч. Шеррингтон, И.М. Сеченов, И.П. Павлов,
П.К. Анохин). Понятие о врожденных и приобретенных программах
поведения.
2. Рефлекторная дуга моносинаптическая, полисинаптическая.
3. Рефлекторное кольцо. Обратная афферентация, ее значение.
4. Понятие о функциональной системе (П.К. Анохин), ее компоненты, роль системообразующего фактора. Интеграция психических, вегетативных и моторных функций.
5. Нервный центр. Виды связей нейронов в нервном центре.
Многоуровневая организация нервного центра по И.П. Павлову.
Практические работы
1. Рецептивные поля рефлексов (зрачкового, мигательного,
глотательного и др.).
2. Коленный и ахиллов рефлексы у человека.
3. Время двигательного рефлекса правой и левой руки на звук.
19
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Рецептивные поля рефлексов (мигательного, зрачкового, глотательного и др.).
Для работы необходимо: фонарик, вата, 5%-й раствор лимонной кислоты, дистиллированная вода.
Методика работы. Для вызова мигательного рефлекса прикоснитесь ватной метелочкой к ресницам верхнего века.
Для вызова зрачкового рефлекса затемните один глаз рукой
или освещайте светом, наблюдайте за реакцией зрачка другого глаза.
Для вызова чихательного рефлекса раздражайте ватной метелочкой слизистую оболочку нижнего носового хода.
Для вызова слезоотделительного рефлекса раздражайте ватной метелочкой слизистую оболочку нижнего носового хода. Глотательный рефлекс получите раздражением корня языка пищевым комком или водой.
Для вызова слюноотделительного рефлекса наносят 5%-й раствор лимонной кислоты на переднюю треть языка.
Результаты. Заполните таблицу (табл. 6), укажите рецептивное
поле, раздражитель, действующий на него, и рефлекторный ответ.
Таблица 6
Рецептивные поля рефлексов
Название рефлекса
Зрачковый рефлекс
Зрачковый рефлекс
Мигательный рефлекс
Слезовыделительный
Чихательный
Глотательный
Слюноотделительный
Раздражитель
Рецептивное поле Рефлекторный ответ
Сужение зрачка
Расширение зрачка
Мигание
Слезоотделение
Чихание
Глотание
Слюноотделение
Выводы:
1. Дать определение рецептивному полю.
2. Какова роль рецептивного поля для вызова безусловных рефлексов?
20
Работа 2. Коленный и ахиллов рефлексы у человека.
Для работы необходимо: неврологический молоточек.
Методика работы. Коленный рефлекс вызываем двумя способами:
1. Испытуемый сидит, закинув ногу на ногу. Ударом молоточка по сухожилию четырехглавой мышцы бедра вызываем растяжение этой мышцы, что приводит к ее рефлекторному сокращению
и разгибанию голени (рис. 1).
Рис. 1. Схема вызова коленного рефлекса
2. Испытуемый сидит на стуле, вытянув полусогнутые в коленях ноги перед собой, расположив переднюю часть стопы ног на одной линии. Вызовите коленный рефлекс, как описано выше, на правой и левой ноге. Сравните величину рефлекса правой и левой ноги.
Для вызова ахиллова рефлекса испытуемый должен встать коленями на стул. Ударом молоточка по ахиллову сухожилию вызываем растяжение икроножной мышцы, что приводит к ее рефлекторному сокращению и тыльному сгибанию стопы (рис. 2).
Результаты. Нарисуйте схемы рефлекторных дуг указанных
рефлексов, укажите локализацию нервных центров (рис. 3).
Выводы:
1. С каких рецепторов возникают эти рефлексы?
2. Какие нейроны участвуют в формировании рефлекторных дуг?
3. Клиническое значение этих рефлексов.
21
Рис. 2. Схема вызова ахиллова рефлекса
Рис. 3. Рефлекторные дуги рефлексов
Работа 3. Время двигательного рефлекса правой и левой руки
на звук.
Для работы необходимо: рефлексометр.
Методика работы.
1-й вариант. Работа выполняется на кафедре.
22
Испытуемый кладет кисть руки на кнопку рефлексометра и выполняет словесную инструкцию: «При появлении звукового сигнала
нажмите на кнопку». С помощью рефлексометра регистрируют
время двигательной реакции руки на звук (дают 10 предъявлений
сигнала для правой руки, затем столько же для левой). Определяют
среднее значение времени рефлекса для каждой руки.
2-й вариант. Работа выполняется дома. Необходимо скачать
приложение на телефон.
Результаты. Записать среднее значение времени двигательной реакции для правой и левой руки.
Выводы:
1. Из чего складывается время рефлекса?
2. Какими причинами можно объяснить функциональную
асимметрию рефлекторной реакции?
2.2. Торможение в ЦНС. Принципы координации
рефлекторных процессов
Цель. Изучить особенности возникновения и протекания процессов возбуждения и торможения в ЦНС. Сформировать представление о структуре и функции нейронных сетей, механизмах координации рефлекторных процессов.
Теоретические вопросы
1. Характеристика процессов возбуждения в ЦНС.
2. Характеристика процессов торможения в ЦНС (И.М. Сеченов); пре- и постсинаптическое торможение.
3. Особенности передачи информации в нервных центрах: регуляция входа информации, одностороннее проведение, суммация,
23
трансформация ритма, синаптическое облегчение, синаптическая депрессия, низкая лабильность, высокая утомляемость, чувствительность к недостатку кислорода и нейротропным ядам.
4. Принципы координации рефлекторной деятельности: взаимоотношения процессов возбуждения и торможения (на уровне
нейрона, на уровне нервных центров), принцип обратной связи,
принцип доминанты, принцип субординации.
Практические работы
1. Облегчение коленного рефлекса.
2. Реципрокное торможение двигательного рефлекса.
3. Посттетанические изменения времени двигательного рефлекса.
4. Опыт Сеченова – торможение спинальных рефлексов (виртуальная работа).
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Облегчение коленного рефлекса.
Для работы необходимо: неврологический молоточек.
Методика работы. Вызвать коленный рефлекс ударом по сухожилию четырехглавой мышцы бедра, отметить его выраженность.
Для облегчения протекания этого рефлекса испытуемый должен сложить руки в замок и сильно тянуть в стороны. Одновременно экспериментатор вызывает коленный рефлекс на той же ноге, что и в первый раз. Отметить изменение выраженности рефлекса.
Результаты. Записать величину рефлекса в исходном состоянии и после облегчения.
Величина коленного рефлекса исходная =
Величина коленного рефлекса во время замка =
Величину рефлекса выражать в терминах: слабый, средний,
выраженный.
Вывод. Объяснить причину облегчения протекания коленного
рефлекса.
24
Работа 2. Реципрокное торможение двигательного рефлекса.
Для работы необходимо: рефлексометр, кистевой эспандер.
Методика работы. Провести 10-кратное исследование времени двигательной реакции на звук для правой руки. Подсчитать
среднее значение. Проделать то же самое с одновременной динамической работой левой рукой. Подсчитать среднее значение.
Результаты. Записать исходное и опытное время двигательной реакции правой руки на звук. Нарисовать схему реципрокного
торможения в нервных центрах.
Выводы:
1. Дать характеристику реципрокного торможения.
2. Указать его механизм.
Работа 3. Посттетанические изменения времени двигательного рефлекса.
Для работы необходимо: рефлексометр, кистевой эспандер.
Методика работы. Провести 10-кратное исследование времени двигательной реакции на звук для правой руки. Подсчитать
среднее значение. Той же рукой выполнить в течение 1 мин динамическую работу с помощью эспандера. Сразу же после работы определить время двигательной реакции на звук (пять значений). Подсчитать среднюю величину.
Результаты. Записать среднее исходное и опытное время двигательной реакции правой руки на звук.
Вывод. Объяснить причину изменения времени рефлекса.
Работа 4. Опыт Сеченова – торможение спинальных рефлексов (виртуальная работа).
Для работы необходимо: компьютер, модель опыта, записанная в программе Microsoft Power Point.
Методика работы.
1. Включить компьютер, на рабочем столе найти иконку «Опыт
Сеченова», щелкнуть по ней дважды левой кнопкой мыши. Появляется надпись «Схема опыта Сеченова».
25
2. Щелкнуть левой кнопкой мыши; появится схема опыта: мозг
лягушки с указанием уровня разреза, лягушка, подвешенная за нижнюю челюсть на штативе.
3. Щелкнуть левой кнопкой мыши; лапка лягушки, опущенная
в стаканчик с кислотой, сгибается и удаляется из стаканчика (возник
защитный сгибательный рефлекс). Подсчитайте время, необходимое
для извлечения лапки из раствора кислоты.
4. Щелкнуть левой кнопкой мыши; появится схема мозга лягушки и лягушка, подвешенная на штативе. На мозг накладывается
кристалл поваренной соли, мозг возбуждается.
5. Щелкнуть левой кнопкой мыши; лапка лягушки погружается
в раствор серной кислоты. Возбуждение мотонейронов тормозится
сигналами из головного мозга. Лапка остается в кислоте, т.е. защитный сгибательный рефлекс тормозится.
Рассмотреть часть А схемы опыта (рис. 4): мозг лягушки с указанием уровня разреза, лягушка, подвешенная за нижнюю челюсть
на штативе. Лапку лягушки опускают в стаканчик с 0,5%-м раствором серной кислоты, и она сразу же сгибается (возник защитный сгибательный рефлекс, благодаря которому лапка удаляется из стаканчика). Обычно время, необходимое для извлечения лапки из раствора
кислоты, составляет 1‒3 с.
А. При погружении лапки
в кислоту ___________
Б. При раздражении ствола
головного мозга поваренной
солью наблюдается
______________
А
Б
Рис. 4. Схема опыта Сеченова
26
Рассмотреть часть Б схемы опыта (см. рис. 4). На разрез мозга
на уровне зрительных бугров среднего мозга положен кристалл поваренной соли, мозг возбуждается. Лапку лягушки погружают в раствор серной кислоты, но защитный рефлекс не возникает или возникает через 5‒10 с и более. Возбуждение мотонейронов спинного
мозга, стимулируемое с хеморецепторов кожи (защитный рефлекс),
тормозится сигналами из головного мозга. Лапка остается в кислоте,
т.е. защитный сгибательный рефлекс тормозится.
Результаты.
Записать исходное значение времени рефлекса. Отметить отсутствие рефлекса при раздражении ствола головного мозга кристаллом поваренной соли.
Выводы. Объяснить причину торможения защитного сгибательного рефлекса в опыте Сеченова.
2.3. Двигательная система.
Роль отделов ЦНС в регуляции тонуса мышц
Цель. Изучить структурно-функциональную организацию сенсорного и моторного отделов двигательной системы, тонические рефлексы ствола мозга, функцию вестибулярного анализатора.
Теоретические вопросы
1. Значение соматической нервной системы: поддержание
позы и равновесия, ориентация и движение тела в пространстве,
обеспечение различных видов рабочих движений, коммуникаций.
Роль ассоциативных зон коры и лимбической системы в формировании замысла движений.
2. Отделы соматической системы.
2.1. Соматосенсорный отдел. Афферентный синтез (проприоцептивные, тактильные, вестибулярные и др. сигналы). Восходящие пути (проприоцептивные, тактильные, вестибулярные). Структурно-функциональная организация сенсорных областей коры:
27
соматотопическая организация, сенсорные колонки, сенсорный гомункулюс.
2.2. Соматомоторный отдел. Структурно-функциональные
особенности двигательных областей коры (соматотопическая организация, двигательные колонки, моторный гомункулюс). Пирамидные и экстрапирамидные пути.
3. Тонические рефлексы ствола мозга: статические, статокинетические.
4. Строение и функции вестибулярного анализатора.
Практические работы
1. Вращательная проба Барани.
2. Оценка интегральной функции ЦНС по поддержанию позы
и равновесия.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Вращательная проба Барани.
Для работы необходимо: кресло Барани, секундомер, линейка.
Методика работы. Исследование провести на двух испытуемых – с хорошей и плохой переносимостью вращения.
Студента усаживают в кресло Барани. Обследуют состояние
двигательной и вегетативной систем. Отмечают у испытуемого отсутствие нистагма глаз, проверяют координацию движений: характер движения по прямой линии с закрытыми глазами и вытянутыми
вперед руками, проводят пальце-носовую пробу, пробу почерка. Отмечают симметричность позы испытуемого. Регистрируют частоту
пульса, определяют ширину зрачков, отмечают цвет лица. Затем вращают испытуемого в кресле Барани 10 раз за 20 с при склоненной к
груди голове. Сразу после остановки кресла отмечают положение туловища, засекают по секундомеру длительность нистагма глаз, отмечают цвет лица, частоту пульса. После прекращения нистагма проводят пальце-носовую пробу, пробу почерка, движение по прямой
28
линии, отмечают наличие ощущений головокружения, тошноты, вращения окружающего пространства и др.
Результаты. Полученные результаты внести в таблицу (табл. 7).
Таблица 7
Показатели
Первый испытуемый
до
после
вращения
вращения
Второй испытуемый
до
после
вращения
вращения
Соматические:
1. Нистагм глаз, с
2. Пальценосовая проба
3. Почерк
4. Движение по прямой
5. Поза в кресле
Вегетативные:
1. Ширина зрачка, мм
2. Частота пульса, мин
3. Цвет лица
Сенсорные реакции
Выводы:
1. Сравнить реакцию двух испытуемых.
2. Какие механизмы обеспечивают вестибуло-моторные, вестибуло-вегетативные и вестибуло-сенсорные реакции испытуемых
на вращение?
Работа № 2. Оценка интегральной функции ЦНС по поддержанию позы и равновесия.
Для работы необходимо: секундомер.
Методика работы. Определяют время удержания равновесия
в позе стоя на одной ноге. Испытуемый встает на одну ногу, руки по
швам, вторая нога согнута в колене под углом 45о. Засекают время от
начала пробы до появления раскачиваний или отклонения ноги (рук)
от исходного положения. Проделывают то же самое при закрытых
глазах для выявления роли обратной связи от зрительной системы
(качество управления равновесием). Для оценки влияний
29
вестибулярного анализатора на управление позой и равновесием
провести пробу, отклонив голову назад, или оценить равновесие на
одной ноге после 20-секундного вращения вокруг своей оси.
Сравнить результаты трех этапов исследования у разных испытуемых.
Результаты. Внести данные в таблицу (табл. 8).
Таблица 8
Время удержания равновесия, с
Испытуемый
Исходное
При закрытых
глазах
При раздражении
вестибулярного аппарата
Выводы:
1. Указать отделы мозга, участвующие в поддержании позы
и равновесия.
2. Оценить роль вестибулярного анализатора и обратной афферентации от зрительной системы для качества поддержания позы
и равновесия.
2.4. Частная физиология отделов мозга (семинар)
Цель. Рассмотреть основные функции отделов мозга, опираясь
на знания анатомии структур мозга.
Теоретические вопросы
1. Двигательные, вегетативные и интегративные функции
спинного мозга.
2. Физиология ствола мозга. Функции ядер черепно-мозговых
нервов.
3. Физиология ретикулярной формации ствола мозга. Восходящие и нисходящие влияния.
30
4. Физиология мозжечка: функции мозжечка, симптомы поражения червя и полушарий мозжечка.
5. Релейные и неспецифические функции таламуса.
6. Лимбическая система, роль в автоматизированном управлении
гомеостазом, поведенческими реакциями достижения цели, эмоциями.
7. Функции базальных ядер. Афферентные и эфферентные связи.
Значение для планирования и контроля произвольной двигательной активности, для формирования целенаправленного поведения и познавательной деятельности человека. Симптомы поражения ядер.
8. Функции коры больших полушарий: сенсорные, моторные
и ассоциативные зоны.
31
3. НЕРВНАЯ И ГУМОРАЛЬНАЯ РЕГУЛЯЦИЯ
ВИСЦЕРАЛЬНЫХ ФУНКЦИЙ
3.1. Физиология и регуляция активности
вегетативной (автономной) нервной системы
Цель. Изучить принципы функционирования автономной
нервной системы (АНС).
Теоретические вопросы
1. Функции АНС: регуляция деятельности внутренних органов
и их кровоснабжения, регуляция транспортного и метаболического
обеспечения разных форм деятельности организма.
2. Надсегментарные центры симпатического отдела: локализация и функции.
3. Сегментарные центры симпатического отдела: локализация,
механизм передачи возбуждения в ганглиях, постганглионарные
нейроны, их медиаторы, механизм передачи возбуждения в периферических синапсах.
4. Надсегментарные центры парасимпатического отдела: локализация и функции.
5. Сегментарные центры парасимпатического отдела: локализация, механизм передачи возбуждения в ганглиях, постганглионарные нейроны, их медиаторы, механизм передачи возбуждения в периферических синапсах
6. Метасимпатическая система. Структура и локализация: осцилляторные, моторные, рецепторные нейроны. Медиаторы метасимпатической системы. Автономный характер работы метасимпатической системы. «Местные рефлексы», взаимоотношения с симпатической и парасимпатической нервной системой.
7. Биоритмы АНС и варианты функциональных взаимоотношений симпатического и парасимпатического отделов у разных людей.
8. Рефлексы с висцерорецепторов: висцеро-висцеральные, висцеро-кутанные, висцеро-соматические.
32
9. Кутано-висцеральные рефлексы, рефлексы с проприорецепторов и вестибулорецепторов (сомато-висцеральные и вестибуловисцеральные).
10. Эффекты с рецепторов органов чувств на внутренние органы.
Практические работы
1. Зрачковые содружественные рефлексы.
2. Оценка тонуса отделов АНС, регулирующих состояние сердечно-сосудистой системы в покое и при физической нагрузке.
3. Оценка влияние ортостатики и клиностатики на тонус АНС.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Зрачковые содружественные рефлексы.
Для работы необходимо: источник света (ручка-фонарик),
линейка.
Методика работы:
А. Испытуемый смотрит вдаль через плечо экспериментатора.
При обычном освещении определить ширину правого и левого
зрачка, убедиться, что она одинакова. Затем изучить реакцию зрачка
на свет. Осветить глаз светом. При этом суживаются зрачки обоих
глаз ‒ содружественная реакция. Измерить ширину зрачка.
Б. Испытуемый смотрит вдаль через плечо экспериментатора.
При обычном освещении определить ширину зрачка, записать в тетрадь. Закрыть один глаз рукой. Ширина зрачка увеличивается. Измерить ширину зрачка при этой содружественной реакции, в мм.
Результаты. Занести результаты в таблицу (табл. 9).
Таблица 9
Испытуемый
Исходная ширина
зрачка, мм
Свет
Ширина зрачка, мм
Темнота
33
Выводы:
1. Как изменяется величина зрачка при действии света, какой
отдел АНС обеспечивает эту реакцию?
2. Как изменяется величина зрачка при действии темноты, какой отдел АНС обеспечивает эту реакцию?
3. Оценить преобладающие тонические влияния отделов АНС
на мышцы зрачка испытуемых в обычных условиях.
4. Сравнить эти влияния у разных испытуемых.
Работа 2. Оценка тонуса отделов АНС, регулирующих состояние сердечно-сосудистой системы в покое и при физической
нагрузке.
Для работы необходимо: секундомер, тонометр.
Методика работы. В покое сидя после 10 мин спокойного пребывания определить ЧСС за 1 мин и измерить АД. По формуле Кердо
рассчитать преобладающее тоническое влияние отдела АНС на сердечно-сосудистую систему.
Затем испытуемый выполняет физическую работу (20 приседаний за 30 с), и вновь на 1-й мин после нагрузки измеряют АД и
ЧСС. Рассчитать индекс Кердо после приседаний по формуле
Индекс Кердо 
1  АДдиаст. 100%.
ЧСС
– 0 ‒ значение индекса Кердо ‒ функциональное равновесие
нервной системы (амфотония, нормотония);
– более 0 ‒ преобладает симпатический тонус;
– менее 0 ‒ преобладает парасимпатический тонус.
Результаты. Внести в таблицу полученные данные (табл. 10).
Выводы:
1. Оценить тонус АНС в покое.
2. Оценить влияние физической работы на тонус АНС.
34
Таблица 10
Условия
ЧСС
Показатели
АД диаст.
Индекс Кердо
Покой
Заключение
1-й испытуемый
2-й испытуемый
3-й испытуемый
Физическая нагрузка
1-й испытуемый
2-й испытуемый
3-й испытуемый
Работа 3. Оценка влияния ортостатики и клиностатики на тонус АНС.
Для работы необходимо: секундомер, кушетка.
Методика работы:
1. Ортопроба. У испытуемого, спокойно лежащего не менее
10 мин, подсчитать пульс. Затем испытуемый по команде встает и
сразу в течение первых 15 с у него подсчитывают ЧСС, затем – в течение 5 мин, в конце каждой минуты вновь считают пульс. В норме
при переходе испытуемого из горизонтального положения в вертикальное (ортостатическая проба) пульс учащается на 6–24 удара.
Учащение более чем на 24 удара указывает на усиление реактивности симпатической системы. На 5-й мин ЧСС в норме превышает исходные значения на 6–12 уд./мин, что указывает на нормальное вегетативное обеспечение деятельности сердца.
2. Клинопроба. Пульс на 5-й мин ортопробы считают исходным для клинопробы. Испытуемый по команде ложится и сразу в течение первых 15 с считают ЧСС, затем – в течение 5 мин в конце
каждой минуты считают ЧСС.
При переходе человека из положения стоя в положение лежа
пульс замедляется в норме на 6–12 уд./мин, при избыточной реактивности парасимпатической системы замедление более выражено. На
5-й мин клинопробы ЧСС должна вернуться к исходным значениям
35
ортопробы, зарегистрированным через 10 мин спокойного лежания.
В норме допускается урежение ЧСС на 4–6 уд./мин.
Результаты. Данные внести в таблицу (табл. 11).
Таблица 11
Функциональная
проба
Ортостатическая
Клиностатическая
ЧСС исх. ЧСС в первые 15 с
1
2
Минуты
3
4
5
Выводы:
1. Как изменяется реактивность симпатической и парасимпатической систем в пробах?
2. Какое вегетативное обеспечение гемодинамики в ортопробе
и клинопробе? Соответствуют ли сдвиги нормативам?
3.2. Гуморальная и нейрогуморальная
регуляция функций (семинар)
Цель. Изучить общие механизмы поддержания постоянства
внутренней среды организма.
Теоретические вопросы
1. Механизмы регуляции постоянства внутренней среды. Гомеостаз. Гомеостатические механизмы.
2. Понятие о регуляции и саморегуляции функций.
3. Функциональная система. Эфферентные механизмы регуляции функций: а) нервные, с участием ВНС; б) гуморальные, с участием гипоталамо-гипофизарной системы. Понятие о здоровье и болезни с позиций регуляции и саморегуляции функций организма.
4. Местный уровень саморегуляции. Понятие о структурнофункциональном элементе ткани. Местный контур саморегуляции
с участием метаболитов и биологически активных веществ.
36
5. Межклеточные связи. Виды информационных связей между
клетками (нервные, гуморальные, локальные, дистантные).
6. Классификация и характеристика первичных посредников.
Способы передачи информации с участием водо- и жирорастворимых первичных посредников. Ионотропные и метаболотропные хеморецепторы.
7. Характеристика вторичных посредников: циклических нуклеотидов, метаболитов фосфатидилинозитола-4,5-дифосфата, ионизированного кальция. Взаимоотношения посредников, обеспечивающих ответ клетки и организма.
8. Первичные посредники в деятельности гипоталамо-гипофизарной системы, эндокринной системы. Гормоны желез внутренней
секреции и их функции.
8. Ауторегуляция в деятельности гипоталамо-гипофизарно-эндокринной системы.
37
4. ФИЗИОЛОГИЯ КРОВИ
4.1. Гомеостатическая функция крови
Цель. Изучить механизмы, обеспечивающие постоянство состава крови – гомеостаз. Функции крови.
Дать характеристику транспортной функции крови, эритрокинетике. Ознакомиться с методами исследования крови: определения
количества гемоглобина, подсчета эритроцитов.
Теоретические вопросы
1. Характеристика крови как части внутренней среды организма. Понятие крови как жидкой ткани: состав, функции, основные
константы.
2. Осмотическое давление крови и биологических жидкостей.
Функциональная система поддержания осмотического давления крови.
3. Кислотно-щелочное равновесие жидких сред организма. Буферные системы крови. Функциональная система поддержания рН крови.
Практические работы
1. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ).
2. Определение осмотической резистентности эритроцитов.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ).
Для работы необходимо: штатив Панченкова, донорская
кровь, 2 часовых стекла, резиновая груша, 3%-й раствор цитрата
натрия, резиновые перчатки.
Методика работы. В капилляр для СОЭ до метки 50 (Р)
набрать раствор цитрата натрия и выдуть на часовое стекло, капилляр промыть цитратом. Набрать кровь дважды в капилляр до
метки К, выдуть на часовое стекло с каплей цитрата, перемешать,
38
набрать в капилляр до метки К (0) и поставить в штатив прибора Панченкова на 1 ч.
Результат. Записать, насколько мм/ч осели эритроциты. Зарисовать капилляр с осевшими эритроцитами. Обозначить метки.
Выводы:
1. Сравнить результат с нормальной величиной СОЭ.
2. Объяснить причины оседания эритроцитов.
Работа 2. Определение осмотической резистентности эритроцитов (рис. 5). Демонстрационная работа.
Осмотическая резистентность эритроцитов – концентрация
раствора NaCl, при которой происходит осмотический гемолиз.
Для работы необходимо: донорская кровь, штатив с 8 пробирками, в которых находится по 2 мл раствора поваренной соли разной
концентрация (0,8; 0,7; 0,6; 0,5; 0,4; 0,3; 0,2; 0,1 %); капилляр из гемометра Сали с делением 0,02 мл, резиновая груша, вата, резиновые
перчатки.
Методика работы: в каждую пробирку с помощью капилляра
поместить по 0,02 мл донорской крови, перемешать, оставить на 30 мин.
Рис. 5. Определение осмотической резистентности эритроцитов
Результат. Зарисовать пробирки, указать концентрацию раствора, при которой произошел частичный и полный гемолиз эритроцитов (так называемая «лаковая кровь» – прозрачная и блестящая).
39
Выводы:
1. Сравнить полученные величины с нормой минимальной
и максимальной осмотической резистентности эритроцитов.
2. От чего зависит осмотическая резистентность эритроцитов?
4.2. Транспортная функция крови
Цель. Дать характеристику транспортной функции крови,
эритрокинетики, ознакомиться с методами исследования крови:
определением количества гемоглобина, подсчетом эритроцитов,
принципом работы гематологического анализатора.
Теоретические вопросы
1. Морфофункциональная характеристика эритроцитов, физиологические основы эритропоэза, роль эритроцитов в транспорте
газов крови, физиологический гемолиз.
2. Гемоглобин, его виды, соединения с газами. Кривая диссоциации оксигемоглобина, ее физиологическая характеристика.
Практические работы
1. Подсчет эритроцитов в камере Горяева.
2. Определение количества гемоглобина по Сали.
3. Определение количества гемоглобина с помощью гемоглобинометра «Минигем».
4. Определение насыщенности эритроцитов гемоглобином ‒
индексы.
5. Принцип работы геманализатора.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Подсчет эритроцитов в камере Горяева.
Для работы необходимо: донорская кровь, камера Горяева
(рис. 6), покровное стекло, пробирка, капилляр из гемометра Сали,
микроскоп с двумя объективами (х8, х40), резиновая груша, мерная
пипетка на 5 мл, 3%-й раствор NaCl, резиновые перчатки, вата.
40
Рис. 6. Камера Горяева
Методика работы. Притереть покровное стекло к камере Горяева для создания над сеткой камеры высотой 0,1 мм. В пробирку
налить 4 мл 3%-го раствора NaCl. В капилляр из гемометра Сали
набрать донорскую кровь до метки (0,02 мл), перенести ее в пробирку, перемешать (кровь развели в 200 раз), разведенную кровь поместить в камеру Горяева с помощью стеклянной палочки. При малом увеличении микроскопа рассмотреть сетку в камере, найти левый верхний большой квадрат, деленный на малые, перевести его в
центр поля зрения и поставить большое увеличение. Считать эритроциты в 5 больших квадратах, разделенных на 16 малых. Для подсчета
эритроцитов выбрать большие квадраты по диагонали. В каждом
большом квадрате считать эритроциты по порядку в составляющих
его малых квадратах, используя правило Егорова: в квадрате считают
эритроциты, расположенные на его площади и на левой и верхней
его сторонах.
Формула для подсчета эритроцитов:
Эр 
А‧ 200 ‧ 4000 ‧ 106
,
80
где А – общее количество эритроцитов в 5 больших квадратах; 200 –
разведение; 4000 – во столько раз объем жидкости над малым квадратом меньше объема 1 мм3 (сторона квадратика – 1/20 мм, высота
41
камеры – 1/10 мм); 106 – для перевода значения в объем 1 л; 80 – количество маленьких квадратов.
Результаты. Зарисовать сетку с большими и малыми квадратами, начертить 5 больших квадратов, деленных на малые, внести в
каждый малый квадрат число найденных эритроцитов, сложить все
значения, записать число А, рассчитать количество эритроцитов по
формуле.
Выводы:
1. Сравнить полученный результат с нормой.
2. Как называется отклонение от нормы в большую и меньшую
стороны?
3. Описать морфологию эритроцита и зарисовать.
Работа 2. Определение количества гемоглобина по Сали.
Для работы необходимо: донорская кровь, гемометр Сали
(рис. 7), капилляр на 0,02 мл крови, пипетка, 0,1н раствор соляной
кислоты, вата, дистиллированная вода, стеклянная палочка, резиновые перчатки.
Рис. 7. Гемометр Сали
42
Методика работы. В среднюю пробирку прибора Сали налить
0,1н раствор НСl до нижней метки, капилляром набрать кровь из флакона (0,02 мл) и перенести ее в раствор кислоты, не вынимая капилляр,
промыть его кислотой, содержимое пробирки перемешать, поставить
ее в штатив на 5–10 мин. Это время необходимо для полного превращения гемоглобина в солянокислый гематин темно-коричневого
цвета. Затем к содержимому пробирки по каплям добавлять дистиллированную воду, каждый раз перемешивая с раствором стеклянной палочкой. Довести цвет исследуемого раствора до цвета стандарта.
Результаты. Прочитать цифру на средней пробирке прибора
Сали, соответствующую уровню полученного раствора, записать результат. Указать количество гемоглобина в г/л, так как прибор Сали
дает его в граммах на 100 мл крови.
Выводы:
1. Сравнить полученный результат с нормой количества гемоглобина.
2. От чего зависит количество гемоглобина?
Работа 3. Определение количества гемоглобина фотометрическим методом при помощи гемоглобинометра «МиниГЕМ».
Для работы необходимо: гемоглобинометр фотометрический,
дистиллированная вода, 0,04%-й раствор аммиака, скарификатор, капилляр для гемометра Сали, спирт, йод, вата, 2 пробирки.
Методика работы:
1. Установка оптического нуля. Чистую кювету наполняют дистиллированной водой и проводят измерение плотности в приборе.
Если шкала прибора показывает значения от –1 до +1, то проводят
дальнейшие исследования.
2. Исследование гемоглобина. В две пробирки наливают по
2 мл 0,04%-го раствора аммиака. Берут кровь капилляром для гемометра Сали до метки и выливают в каждую пробирку, тщательно перемешивают. Переливают смесь в оптическую кювету из одной пробирки (вторая для надежности), кювету помещают в ячейку прибора.
43
После звукового сигнала появляется число, соответствующее концентрации гемоглобина в 1 л крови.
Результаты. Записать результат в тетрадь.
Вывод. Сравнить полученный результат с нормой количества
гемоглобина.
Работа 4. Определение насыщенности эритроцитов гемоглобином ‒ индексы.
Определение насыщенности эритроцитов гемоглобином.
4.1. Расчет содержания гемоглобина (Нb) в одном эритроците (СГЭ).
Методика работы. Расчет провести по формуле
СГЭ 
Количество Нb в 1 л крови
.
Количество эритроцитов в 1 л крови
Результат. Результат выразить в пг, 1 г – 1012 пг.
Вывод. Сравнить полученный результат с нормой (27‒33 пг).
4.2. Расчет цветового показателя крови (ЦП).
Методика работы. Расчет провести по формуле
ЦП 
Опытное кол-во Нb, г/л Опытное кол-во эритроцитов, л
:
.
167 г/л
5 ‧ 1012 /л
Результат. Записать результат расчета.
Выводы:
1. Сравнить полученный результат с нормой (0,85‒1,05).
2. Объяснить смысловую разницу двух методов расчета насыщенности эритроцитов гемоглобином.
Работа 5. Автоматический анализ клеток крови с помощью гематологического анализатора MEDONIC СА–530. Ознакомление
с принципом исследования.
Прибор полностью автоматизированный, позволяет измерять
20 параметров, используя цельную кровь, либо предварительно разведенную. Определяет гематокрит, содержание в крови лейкоцитов,
44
эритроцитов, тромбоцитов, лимфоцитов, моноцитов, гранулоцитов,
гемоглобина, рассчитывает СГЭ и т.д.
Используются кондуктометрический метод для подсчета клеток и установления их размера, колориметрический метод ‒ для измерения гемоглобина.
Кондуктометрический принцип заключается в следующем:
клетка, проходя через отверстие датчика, создает изменения проводимости для постоянного тока, текущего от одного электрода к другому,
это генерирует импульс, амплитуда которого пропорциональна объему
клетки. Количество импульсов соответствует концентрации клеток.
Современные автоматические счетчики крови оценивают размеры, структурные, цитохимические и другие характеристики клеток. Они анализируют около 10 000 клеток в одном образце и имеют
несколько различных каналов подсчета клеточных популяций и концентрации гемоглобина. На основании количества определяемых параметров и степени сложности их можно условно разделить на три
основных класса:
I класс ‒ автоматические гематологические анализаторы, определяющие до 20 параметров, включая расчетные показатели красной
крови и тромбоцитов, гистограммы распределения лейкоцитов,
эритроцитов и тромбоцитов по объему, а также частичную дифференцировку лейкоцитов на три популяции: лимфоциты, моноциты
и гранулоциты.
II класс ‒ высокотехнологичные гематологические анализаторы, позволяющие проводить развернутый анализ крови, в том
числе полную дифференцировку лейкоцитов по пяти параметрам
(нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты и лимфоциты), создавать гистограммы распределения лейкоцитов, эритроцитов
и тромбоцитов по объему.
III класс ‒ сложные аналитические системы, выполняющие не
только развернутый анализ крови с дифференцировкой лейкоцитов
по пяти параметрам, но и подсчет и анализ ретикулоцитов, некоторых субпопуляций лимфоцитов.
45
В основе работы анализаторов I класса лежит кондуктометрический метод. Анализаторы II и III классов используют в своей работе комбинации различных методов.
Разделение эритроцитов и тромбоцитов в современных анализаторах проводится по измерению амплитуды электрического сигнала: тромбоциты при прохождении измерительного канала генерируют электрические импульсы низкой амплитуды. После добавления
лизирующего реагента происходит лизис эритроцитов, и в суспензии
остаются лейкоциты. Проба подсчитывается повторно, и из первого
счета импульсов высокой амплитуды (эритроциты + лейкоциты) вычитают импульсы высокой амплитуды второго счета (лейкоциты).
Разница импульсов высокой амплитуды до и после лизиса соответствует количеству эритроцитов ‒ RBC (red blood cells).
При суммировании амплитуд импульсов в результате подсчета
количества эритроцитов получается величина, отражающая общий
объем, занимаемый эритроцитами, т.е. гематокрит HCT (hematocrit).
Разделив гематокритную величину на концентрацию эритроцитов
(RBC), мы имеем полезную характеристику эритроцитов ‒ средний
объем MCV (mean corpuscular volume).
Аналогичные показатели можно получить и для тромбоцитов:
концентрация тромбоцитов ‒ PLT (platelet), тромбокрит ‒ PCT
(platelet crit), средний объем тромбоцитов ‒ MPV (mean platelet
volume).
Определение гемоглобина проводится гемиглобинцианидным
методом по принципу, который был описан ранее. В последние годы
в большинстве новых моделей гематологических анализаторов используются бесциановые методы. Одним из таких широко применяется гемихромный метод.
Определение количества лейкоцитов возможно только после
лизиса эритроцитов. Эта задача оказалась легко решаемой, так как
свойства мембран эритроцитов и лейкоцитов существенно различаются. Эритроциты легко лизируются под воздействием многих
поверхностно-активных веществ, при этом лейкоциты, хотя и претерпевают некоторые изменения, остаются целыми. Поэтому
46
при подсчете лейкоцитов, прежде чем пропустить разведенную
суспензию крови через апертуру датчика, к ней добавляют лизирующий раствор ‒ эритроциты разрушаются до очень мелких фрагментов, которые при подсчете лейкоцитов генерируют электрические импульсы очень низкой амплитуды, не влияющие на результат анализа.
Разделение неизмененных лейкоцитов кондуктометрическим
методом на основные субпопуляции невозможно ввиду близости их
объемов, однако можно подобрать такую композицию растворителя
и лизирующего раствора, что различные формы лейкоцитов претерпевают изменения размеров в разной степени и, благодаря этому, могут разделяться данным методом. Изменение объема клетки зависит
от многих факторов, включающих величину и форму ядра, объем цитоплазмы, наличие включений, а также особенности лизирующего
реагента, поэтому размер трансформированных клеток не соответствует размерам клеток при визуальном просмотре их в окрашенном
мазке крови.
Полученные после анализа лейкоциты распределяются на гистограмме следующим образом:
1) область малых объемов (35‒90 фл) формируется лимфоцитами, которые под действием гемолитика значительно уменьшаются
в объеме;
2) гранулоциты (нейтрофилы, базофилы и эозинофилы),
напротив, подвергаются незначительному уменьшению в объеме и
расположены в области 120‒400 фл;
3) между двумя пиками имеется зона так называемых «средних
лейкоцитов» (90‒120 фл), которая лучше всего коррелирует с моноцитами (по этой причине в некоторых анализаторах клетки в этой области указываются как моноциты ‒ MON), однако, учитывая тот
факт, что коэффициент корреляции с моноцитами R = 0,5−0,8 сравнительно невысок, более корректным является название параметра
«средние лейкоциты» или «средние клетки» (MXD); практически
в область средних клеток попадают базофилы и эозинофилы.
47
Высокотехнологические гематологические анализаторы способны осуществлять дифференцированный счет лейкоцитов по 5 (5Diff)
основным популяциям (нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты и лимфоциты), используя различные принципы дифференцирования клеток, оценивать наличие незрелых гранулоцитов, анализировать ретикулоциты и их субпопуляции, производить оценку стволовых гемопоэтических клеток и субпопуляций лимфоцитов.
Многочисленные функции современных гематологических анализаторов стали возможны благодаря развитию новых технологий, которые различаются у разных фирм-производителей.
4.3. Физиология иммунитета
Цель. Изучить роль крови в иммунной защите организма,
Теоретические вопросы
1. Система иммунной защиты организма: иммунитет, клеточные и гуморальные факторы, их значение.
2. Система врожденного иммунитета. Роль Toll-рецепторов в
распознавании бактериальных и вирусных антигенов. Общее количество лейкоцитов, лейкоцитарная формула. Хемотаксис, фагоцитоз,
лизоцим, интерферон, комплемент.
3. Система приобретенного иммунитета. Роль макрофагов как
связующего звена врожденного и приобретенного иммунитета, иммунокомпетентные клетки, их функции. Количество Т- и В-лимфоцитов, их виды. Виды иммуноглобулинов.
4. Группы крови, резус-фактор, правила переливания крови.
Кровезамещающие растворы.
Практические работы
1. Подсчет количества лейкоцитов в камере Горяева.
2. Оценка фагоцитоза.
3. Определение групп крови.
4. Определение резус-фактора.
48
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Подсчет количества лейкоцитов в камере Горяева.
Для работы необходимо: донорская кровь, стекло с луночкой,
камера Горяева, капилляр на 0,02 мл крови, покровное стекло, микроскоп с объективом (×8), пробирка, 3%-й раствор уксусной кислоты,
подкрашенный метиленовой синькой (раствор Тюрка), тигелек, резиновая груша, резиновые перчатки.
Методика работы. В пробирку набрать 0,4 мл раствора
Тюрка. Каплю крови поместить на стерильное стекло с луночкой.
В капилляр набрать кровь до метки 0,02 и перенести ее в раствор
Тюрка (кровь развели в 20 раз), перемешать. Оставить на 5 мин (уксусная кислота растворяет оболочки эритроцитов и лейкоцитов, метиленовая синь окрашивает ядра лейкоцитов).
Притереть покровное стекло к камере Горяева, заполнить камеру раствором. Рассмотреть под микроскопом сетку Горяева, найти
левый верхний квадрат, деленный на малые. Под малым увеличением считать ядра лейкоцитов в каждом по порядку 25 больших
квадратах, деленных на 16 малых. Использовать правило Егорова.
Расчет провести по формуле
Л
В‧ 20 ‧ 4000 ‧106
,
400
где В – количество лейкоцитов в 25 больших квадратах; 20 – разведение; 4000 – во столько раз объем жидкости над малым квадратом
меньше объема 1 мм3 (сторона квадратика – 1/20 мм, высота камеры – 1/10 мм); 106 – для перевода значения в объем 1 л; 400 – количество малых квадратов (в 25 больших квадратах).
Результаты. Записать значения количества лейкоцитов в каждом из 25 больших квадратах, суммировать, записать результат расчета по формуле.
Выводы:
1. Сравнить полученный результат с нормой.
2. Какова роль лейкоцитов?
49
Работа 2. Оценка фагоцитоза.
Фагоциты (микрофаги и моноциты) поглощают чужеродные
объекты (объекты фагоцитоза, ОФ), в качестве которых могут использоваться формалинизированные эритроциты барана (ФЭБ).
Для работы необходимо: в качестве объектов фагоцитоза используют эритроциты (Э) из сухого антигенного эритроцитарного
диагностикума (ЭД), они уже обработаны формалином. В ампулу с
ЭД вносят 2‒3 мл физраствора и помещают в термостат при +37 °C
на сутки. Взвесь Э отмывают физраствором до полного просветления
надосадочной жидкости. Густую взвесь ФЭБ отстаивают 15‒20 мин
для осаждения конгломератов Э, отсасывают верхнюю треть взвеси,
в камере Горяева определяют содержание Э и оценивают качество
взвеси. Признаком хорошего качества взвеси является отсутствие в
ней конгломератов Э и их размер в пределах 2‒3 мкм. Взвесь разводят физраствором до концентрации Э 50‒60 млн/мл.
Методика работы Взятую кровь стабилизируют гепарином из
расчета 25 МЕ на 1 мл крови. В лунку микропланшета или микропробирку вносят 10 мкл крови и такой же объем взвеси ФЭБ. Смесь помещают в термостат при +37 °C, встряхивают ее каждые 5 мин и делают на предметном стекле мазки через 15 мин. Желательно изготовлять маленькие мазки шириной 3,5‒4 мм и длиной 18‒20 мм. Подсчет
фагоцитоза в таких мазках более точен, чем в мазках стандартного
размера. Мазки фиксируют и окрашивают по Романовскому‒Гимзе.
Определяют поглотительную активность 100 фагоцитов (Ф).
Подсчитываю количество фагоцитов, поглотивших объекты фагоцитоза, обозначим их Ф+, среди всех фагоцитов (Ф), и независимо
подсчитывают количество в таких фагоцитах (Ф+) поглощенных ОФ.
Затем используют формулы для расчета процента фагоцитоза
(ПФ) фагоцитарного числа (ФЧ) и фагоцитарного индекса (ФИ).
Показатели активности фагоцитоза:
1. ФП – процент фагоцитирующих нейтрофилов – процент клеток, вступивших в фагоцитоз от общего их количества.
ФП = (число фагоцитов / число всех макрофагов) ‧ 100 %.
50
Например, среди 100 нейтрофилов фагоцитируют микробы
64 клетки, значит
ФП = (64 / 200) ‧ 100 % = 32 %.
2. ФЧ – фагоцитарное число, среднее число поглощенных микробов – частное от деления общего количества поглощенных микробов на процент фагоцитоза. Например, 64 нейтрофила-фагоцита фагоцитировали 214 бактерий, тогда ФЧ = 214 / 64 = 3,34.
3. ФИ = 100n / N,
где n ‒ число фагоцитов, содержащих латекс; N ‒ общее число посчитанных клеток.
Нормальные показатели фагоцитарной активности:
ФИ (процент активных клеток) – 60–95 %;
ФЧ (частиц на клетку) – 3–10.
Результаты. Записать полученные значения параметров фагоцитоза (ПФ, ФЧ, ФИ).
Вывод. Сравнить полученный результат с нормой и оценить активность фагоцитоза.
Работа 3. Определение группы крови.
Для работы необходимо: цоликлоны анти-А и анти-В, тарелка,
донорская кровь, предметное стекло, вата, резиновые перчатки.
Методика работы. На разные части тарелки нанести по капле
цоликлонов анти-А и анти-В. Каплю крови поместить на тарелку. Уголком предметного стекла перенести каплю крови, в 10 раз меньшую по
объему, в каплю с цоликлоном анти-А, затем другим уголком – в каплю
с цоликлоном анти-В; перемешать. Результат определяют через 1 мин.
Результат. Зарисовать результат. Указать наличие агглютинации в каплях.
Вывод. По наличию агглютинации сделать заключение
о группе крови у испытуемого. Если агглютинация наступила:
‒ в обеих каплях – IV группа крови,
‒ с цоликлоном анти-А – II группа крови,
‒ с цоликлоном анти-В – III группа крови,
‒ нет агглютинации в обеих каплях – I группа крови.
51
Работа 4. Определение резус-фактора.
Для работы необходимо: донорская кровь, цоликлон анти-Д,
тарелка, предметное стекло, резиновые перчатки.
Методика работы. На тарелку нанести каплю цоликлона
анти-Д, каплю крови. Уголком предметного стекла перенести каплю
крови, в 10 раз меньшую по объему, в каплю с цоликлоном анти-Д,
перемешать. Результат определяют через 1 мин.
Результаты. Зарисовать результат. Отметить наличие или отсутствие агглютинации.
Вывод. Сделать вывод о резус-принадлежности крови испытуемого. Если агглютинация есть, то резус-фактор в крови имеется,
кровь резус-положительная; если нет – резус-отрицательная.
4.4. Физиология гемостаза
Цель. Рассмотреть свертывающую и противосвертывающую
системы крови, познакомиться с некоторыми методами оценки этих
функций крови.
Теоретические вопросы
1. Гемостаз.
2. Механизмы сосудисто-тромбоцитарного гемостаза.
3. Механизмы гемокоагуляционного гемостаза.
4. Механизмы поддержания жидкого состояния крови (физикохимические механизмы, системы антикоагуляции, фибринолиза).
Практические работы
1. Время свертывания.
2. Длительность кровотечения.
3. Количество тромбоцитов в камере Горяева.
4. Количество и морфология тромбоцитов в мазке по Фонио.
5. Принцип работы коагулометра.
6. Vision hematology: задания в программе.
52
Работа 1. Определение времени свертывания крови.
Для работы необходимо: секундомер, стерильный одноразовый скарификатор, стерильное предметное стекло с луночкой, спирт,
йод, вата, резиновые перчатки.
Методика работы. Обработать безымянный палец левой руки
спиртом, проколоть скарификатором, на стерильное стекло с луночкой нанести 2–3 капли крови из пальца. Обработать палец раствором
йода. Часовое стекло с кровью согревать на ладони и через каждые
0,5 мин проводить скарификатором через каплю, пока за иглой не
потянется первая нить фибрина. Отметить время. Продолжать
наблюдение, отметить время появления желеобразного сгустка.
Время появления первой фибриновой нити – 4-я мин. Время появления желеобразного сгустка – 8-я мин.
Результаты. Записать время появления фибриновой нити и
время появления желеобразного сгустка в минутах.
Выводы:
1. Сравнить полученные результаты с нормой.
2. Объяснить роль фибриногена в процессах свертывания крови.
Работа 2. Определение времени кровотечения по Дюке.
Для работы необходимо: скарификатор, спирт, вата, фильтровальная бумага.
Методика работы. Палец обрабатывают спиртом, прокалывают скарификатором и через каждые 0,5 мин каплю крови, выступающую из прокола, промокают фильтровальной бумагой до
тех пор, пока не прекратится кровотечение. Норма составляет
от 2 до 4 мин.
Результат: подсчитывают количество отпечатков капель на
фильтровальной бумаге, делят на 2 – это минуты.
Выводы:
1. Результат сравнить с нормой.
2. Какие механизмы обеспечивают остановку кровотечения?
53
Работа 3. Подсчет тромбоцитов в камере Горяева.
Для работы необходимо: камера Горяева, донорская кровь,
1%-й раствор оксалата аммония, пробирка, капилляр из гемометра
Сали, фильтровальная бумага, дистиллированная вода.
Методика работы. Для подсчета тромбоцитов предпочтительнее использовать венозную кровь. В качестве антикоагулянта рекомендуется применять ЭДТА (этилендиаминтетраацетат натрия). Исследуемую кровь разводят в 200 раз, для этого в сухую пробирку
набирают 4 мл реактива и 0,02 мл крови, перемешивают и оставляют
на 25‒30 мин для гемолиза эритроцитов. Подготавливают камеру Горяева и заполняют ее предварительно перемешанной разведенной
кровью. Счетную камеру помещают во влажную среду (чашка Петри
с уложенной по краям смоченной водой фильтровальной бумагой) на
5 мин для оседания тромбоцитов. С помощью объектива х40 производят подсчет тромбоцитов в 25 больших квадратах счетной камеры.
Тромбоциты выглядят в счетной камере как мелкие, хорошо преломляющие свет образования. Расчет числа тромбоцитов в 1 мкл крови
проводят по формуле
Х
а  200
а  250  200

а  2000,
1
25
25  250
где X ‒ число тромбоцитов в 1 мкл крови; а ‒ число тромбоцитов,
сосчитанных в 25 больших квадратах счетной камеры; 200 ‒ разведение крови; 25 ‒ число больших квадратов; 250-1 (1/250) ‒ объем одного большого квадрата. На практике число сосчитанных тромбоцитов умножают на 2000.
Результат: записать полученное количество тромбоцитов.
Выводы:
1. Результат сравнить с нормой.
2. Какова роль тромбоцитов в гемостазе?
54
Работа 4. Оценка количества и морфологии тромбоцитов
в мазке по Фонио.
Для работы необходимо: кровь с ЭДТА.
Методика работы: кровь, использованную для подсчета
эритроцитов, перемешивают и готовят тонкие мазки. Фиксируют и
окрашивают по Романовскому‒Гимзе в течение 35‒45 мин. Высохшие мазки микроскопируют с иммерсионным объективом, подсчитывая тромбоциты в тонких местах препарата (эритроциты должны
располагаться изолированно друг от друга). Тромбоциты окрашиваются в розовато-фиолетовый цвет, имеют округлую форму, размер 2‒4 мкм, в центре клетки отчетливо определяется зернистость ‒
грануломер, периферическая часть имеет более светлую окраску,
незернистая ‒ гиаломер. Подсчет производят следующим образом.
В каждом поле зрения микроскопа считают число эритроцитов
и тромбоцитов, передвигая мазок до тех пор, пока не будут просчитаны 1000 эритроцитов.
Расчет. Зная количество эритроцитов в 1 мкл крови и количество тромбоцитов на 1000 эритроцитов, легко рассчитать и содержание тромбоцитов в крови:
Х
a b
,
1000
где X ‒ количество тромбоцитов в 1 мкл крови; а ‒ количество тромбоцитов, подсчитанных в мазке крови на 1000 эритроцитов; b ‒ количество эритроцитов в 1 мкл крови; 1000 ‒ количество эритроцитов,
подсчитанных в мазке крови.
Результат: записать полученное количество тромбоцитов.
Вывод. Описать морфологию тромбоцитов и зарисовать.
Работа 5. Принцип работы коагулометра.
Ознакомление с принципом исследования.
В практике используются одно- и двухканальные коагулометры.
Они имеют встроенный термостат, таймер с автоматическим пуском
55
и остановкой, дисплей, память для сохранения показателей; позволяют
определять время свертывания крови и плазмы, активность гепарина,
фибриногена, факторов свертывания, их концентрацию.
Работа 6. Самостоятельная работа. Установить на телефон
приложение Vision hematology, которое позволяет ознакомиться
с функциями и морфологией всех клеток крови в разделе CellAtlas,
а также решать тесты в разделе CellQuiz.
56
5. Физиология выделения
Цель. Изучить процессы выведения из организма воды, ионов,
продуктов обмена и чужеродных веществ.
Теоретические вопросы
1. Обмен воды и солей в организме. Процессы потребления, депонирования, перераспределения и выведения.
2. Система выделения. Почка как орган выделения. Внепочечные пути выделения.
3. Функции почек.
4. Нефрон как морфофункциональная единица почки. Кровоснабжение нефрона.
5. Фильтрация в почечном клубочке. Движущие силы фильтрации, почечный фильтр. Состав первичной мочи.
6. Регуляция фильтрации.
7. Реабсорбция в почечных канальцах. Порог выведения. Пороговые и беспороговые вещества.
8. Реабсорбция воды и натрия. Противоточно-поворотная система. Регуляция реабсорбции воды и натрия.
9. Секреция в почечных канальцах. Состав вторичной мочи.
10. Выделение азотистых продуктов. Азотистый баланс.
11. Мочевыведение. Регуляция мочевыведения.
Практические работы
1. Рефлекторное потоотделение у человека.
2. Расчет скорости клубочковой фильтрации.
3. Расчет канальцевой реабсорбции.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Рефлекторное потоотделение у человека.
Для работы необходимо: раствор Люголя (1,5 г кристаллического йода, 10 г касторового масла, этиловый спирт до 100 г), сухой
крахмал.
57
Методика работы. Смажьте ладонную поверхность левой кисти трех испытуемых раствором Люголя. Высушите ладони. Нанесите порошок сухого крахмала. При выделении пота йод-крахмальная смесь растворяется, и появляется черно-синее окрашивание. Зафиксируйте время начала потоотделения. Наблюдайте места начала
потоотделения у разных испытуемых.
Результаты. Запишите время начала потоотделения у разных
испытуемых. Зарисуйте в тетради места потоотделения на ладони.
Выводы:
1. Назовите механизм потоотделения.
2. Объясните, почему различается интенсивность потоотделения у разных испытуемых.
Работа 2. Расчет СКФ (скорость клубочковой фильтрации) по
клиренсу креатинина.
Почечный клиренс описывает объем плазмы, полностью очищаемой почками от вещества за единицу времени. Более высокий почечный клиренс предполагает, что вещество может быть выведено
почти полностью за один проход через почки, в то время как низкое
значение описывает вещество, которое может вообще не выводится
почками.
Вода поступает в просвет нефрона при фильтрации в клубочках. Для вычисления количества профильтровавшейся жидкости используют физиологически инертное вещество, свободно проникающее через гломерулярную мембрану с безбелковой частью плазмы.
В этом случае его концентрация в клубочковой жидкости будет такой же, что и в плазме крови. Если это вещество не реабсорбируется
и не секретируется почечными канальцами, то оно будет выделяться
с мочой в том же количестве, в котором прошло через клубочковый
фильтр. Так как большая часть воды фильтрата подвергается обратному всасыванию, то вещество, используемое для определения объема фильтрата, сконцентрируется во столько раз, во сколько раз
уменьшится объем воды в почечных канальцах. Клиренс любой субстанции вычисляют по формуле Ван-Слайка:
58
C = UV / P,
где C ‒ клиренс вещества, мл/мин; U ‒ концентрация исследуемого
вещества в моче, ммоль/л; Р ‒ концентрация того же вещества в
крови, ммоль/л; V ‒ количество мочи, выделенное в 1 мин, мл/мин.
Широкое применение для измерения скорости фильтрации получило определение очищения крови от одного из эндогенных продуктов азотистого обмена ‒ креатинина.
Креатинин ‒ ангидрид креатина, образуется в мышцах из креатинфосфата, вместе с креатином содержится во фракции остаточного азота крови. Креатинин является составной частью мочи. Суточное выделение креатинина с мочой постоянно и пропорционально общей мышечной массе тела.
Содержание креатинина сыворотки крови: мужчины ‒
61‒115 мкмоль/л, или 0,061‒0,115 ммоль/л; женщины ‒ 53‒97 мкмоль/л,
или 0,053‒0,097 ммоль/л. Содержание креатинина в моче у женщин
составляет 5,3‒15,9 ммоль/л, у мужчин ‒ 7,1‒17,7 ммоль/л
Для расчета клиренса эндогенного креатинина определяют
содержание креатинина в плазме, моче и минутный диурез (количество мочи, выделенной за минуту). Для этого делают биохимический анализ крови, мочи и собирают мочу за сутки или проводят
пробу Реберга.
Проведение пробы Реберга. Исследуемый натощак выпивает
400‒500 мл воды или слабого чая и мочится (эту порцию мочи не
исследуют и выливают). Время мочеиспускания точно отмечают.
Ровно через 1 ч собирают мочу (полностью). В середине этого часа
пунктируют локтевую вену и получают 5‒8 мл крови. По объему собранной мочи устанавливают минутный диурез. В крови и моче
определяют концентрацию креатинина.
СКФ по клиренсу креатинина рассчитывают по формуле
С = КмV / Ккр,
где С ‒ клиренс креатинина (объем плазмы, фильтрующейся через
почки в минуту); Км ‒ концентрация креатинина в моче; V ‒ объем
59
мочи, выделенный за 1 мин (минутный диурез); Ккр ‒ концентрация
креатинина в крови.
СКФ в норме составляет 80‒120 мл/мин.
Работа 3. Расчет канальцевой реабсорбции.
Расчет показателя канальцевой реабсорбции воды:
R = (C ‒ V) / C ‧ 100 %,
где R – реабсорбция воды в канальцах, %; С ‒ клиренс, клубочковая
фильтрация, мл/мин; V ‒ диурез, мл/мин.
При нормальной функции почек показатель канальцевой реабсорбции воды равен 95‒99 %.
Вариант 1. Дано: содержание креатинина в моче ‒ 6,8 ммоль/л;
содержание креатинина сыворотки крови ‒ 0,115 ммоль/л; минутный
диурез ‒ 2,0 мл.
1. Рассчитать клиренс креатинина, указывающий на объем
плазмы, фильтрующейся через почки в минуту.
2. Рассчитать реабсорбцию воды в канальцах (в %).
3. Сравнить показатели фильтрации и реабсорбции с нормой.
Вариант 2. Дано: содержание креатинина в моче ‒ 5,3 ммоль/л;
содержание креатинина сыворотки крови ‒ 0,097 ммоль/л; минутный
диурез ‒ 2,0 мл.
1. Рассчитать клиренс креатинина, указывающий на объем
плазмы, фильтрующейся через почки в минуту.
2. Рассчитать реабсорбцию воды в канальцах (в %).
3. Сравнить показатели фильтрации и реабсорбции с нормой.
60
6. ДЫХАНИЕ
6.1. Механизмы газообмена
Цель. Изучить механизмы газообмена в организме.
Теоретические вопросы
1. Этапы дыхания. Механизмы легочной вентиляции (основные и вспомогательные дыхательные мышцы, механизмы изменения
объема грудной полости, свойства легочной ткани, роль замкнутого
внутриплеврального пространства, пневмоторакс).
2. Показатели внешнего дыхания и методы их исследования (легочные объемы и емкости, показатели легочной вентиляции, состав
альвеолярного воздуха и его отличие от вдыхаемого и выдыхаемого).
3. Диффузия газов в легких. Значение парциального давления
и напряжения газов, площади, проницаемости и толщины альвеолярно-капиллярного барьера (длина пути диффузии). Соотношение
вентиляции и перфузии.
4. Транспорт газов кровью. Содержание кислорода и углекислоты в крови. Транспортные формы кислорода и углекислоты. Факторы, влияющие на транспорт газов кровью (напряжение газов, рН и
температура крови, содержание в крови 2,3-дифосфоглицерата). Кислородная емкость крови.
5. Диффузия газов в тканях. Факторы, ее определяющие:
напряжение газов, площадь, проницаемость и толщина гисто-гематических барьеров. Коэффициент утилизации кислорода и его изменение при физической нагрузке. Миоглобин и его значение.
Практические работы
1. Определение жизненной емкости легких (ЖЕЛ) методом
спирометрии.
2. Определение легочных объемов и ЖЕЛ, оценка вентиляции
легких по спирограмме.
61
3. Определение оксигенации артериальной крови с помощью
пульсоксиметра.
4. Определение пиковой скорости выдоха.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Определение жизненной емкости легких (ЖЕЛ) методом спирометрии.
Для работы необходимо: спирометр сухой, номограммы, линейка, вата, дезинфицирующий раствор.
Методика работы. Каждый студент определяет свою ЖЕЛ.
Вставить в спирометр чистый мундштук, обработать его дезинфицирующим раствором, установить стрелку прибора на «0». Сделать
три глубоких вдоха и выдоха, затем, вдохнув максимально глубоко из
атмосферы, сделать максимально глубокий выдох в прибор, выдох
производить плавно, без рывков. По шкале прибора отметить объем.
Для оценки результата исследования найдите свою норму с помощью номограммы. Для этого на номограмме для женщин (мужчин) соедините линейкой значения своего возраста и роста, на пересечении со шкалой ЖЕЛ увидите свою норму ЖЕЛ, т.е. должную
жизненную емкость легких (ДЖЕЛ). Сравните результат ЖЕЛ
с ДЖЕЛ, отклонения не должны превышать ±15 %.
С помощью спирометра можно определить дыхательный
объем (ДО) и резервный объем выдоха.
Определение дыхательного объема: дышать спокойно, производя вдох через нос из атмосферы, а выдох ‒ через рот в спирометр,
сделать пять спокойных выдохов в прибор, отметить по шкале объем
пяти выдохов, рассчитать ДО, разделив объем на 5.
Определение резервного объема выдоха (РОвыд): после нескольких спокойных дыхательных движений в конце очередного
спокойного выдоха задержать дыхание, а затем сделать максимально
глубокий выдох в прибор, отметить объем.
Результаты. Занести в протокол значения ЖЕЛ, ДЖЕЛ, % отношения ЖЕЛ к ДЖЕЛ, величины ДО, РОвыд.
62
Выводы:
1. Соответствует ли значение ЖЕЛ норме?
2. О чем свидетельствует несовпадение реальной ЖЕЛ и должной ЖЕЛ?
3. Что можно рекомендовать, если ЖЕЛ ниже нормы?
Работа 2. Определение легочных объемов и ЖЕЛ, оценка вентиляции легких по спирограмме.
Для работы необходимо: спирограмма, линейка.
Методика работы. Сделать анализ готовых спирограмм с учетом скорости движения ленты прибора 50 мм/мин и калибровки прибора 25 мм/л.
Пользуясь циркулем и линейкой, определить величину ДО,
РОвд и РОвыд, ЖЕЛ по спирограмме. Значения перевести в литры с
учетом калибровки прибора.
Затем по спирограмме рассчитать вентиляцию легких в покое
и при максимальной вентиляции легких (МВЛ). Для этого подсчитать частоту дыхания (ЧД), рассчитать минутный объем дыхания
(МОД) и минутную альвеолярную вентиляцию (МАВ) при этих двух
состояниях. Сведения о функциональных резервах внешнего дыхания дает максимальная вентиляция легких (МВЛ). Это объем воздуха, проходящий за минуту наиболее частого и глубокого произвольного дыхания. Испытуемый максимально глубоко и часто дышит в течение 10 или 15 с, результат приводят к 1 мин. В норме МВЛ
в 8–20 раз больше МОД и достигает 150–180 л/мин. Рассчитать резерв вентиляции легких и альвеол.
1. Определение ДО.
Измерить высоту пяти спокойных дыхательных циклов. Рассчитать высоту среднего цикла. Рассчитать величину ДО в литрах,
составив пропорцию с учетом калибровки прибора.
2. Определение РОвд и РОвыд.
Измерить высоту соответствующих зубцов на спирограмме
и перевести с учетом калибровки миллиметры в литры.
63
3. Определение ЖЕЛ.
Измерить высоту соответствующего зубца на спирограмме
и перевести с учетом калибровки миллиметры в литры.
4. Определение ЧД.
Линейкой на участке спирограммы, соответствующем спокойному дыханию, отмерить 50 мм и подсчитать количество дыхательных циклов.
5. Расчет МОД и МАВ по формулам
МОД = ДО ‧ ЧД;
МАВ = (ДО – VАМП) ‧ ЧД.
6. Рассчитать резерв вентиляции легких и альвеол, поделив
МОД и МАВ при МВЛ на МОД и МАВ при спокойном дыхании.
Результаты. Нарисовать спирограмму (рис. 8). Обозначить
определяемые показатели: ДО, ЧД, РОвд, РОвыд, ЖЕЛ при спокойном дыхании и МВЛ. Записать результаты исследований, расчетные
величины МОД, МАВ и их резервы.
Рис. 8. Спирограмма
64
Выводы:
1. Полученные величины показателей сравнить с нормой.
2. Какими методами исследуют ЖЕЛ?
3. О чем свидетельствует величина ЖЕЛ?
4. О чем свидетельствуют резервы вентиляции?
Работа 3. Определение оксигенации артериальной крови с помощью пульсоксиметра.
Для работы необходимо: пульсоксиметр.
Пульсоксометрия – способ определения процентного соотношения оксигемоглобина в артериальной крови (сатурация) и пульса.
Уровень поглощения кислорода зависит от количества гемоглобина
в крови: чем он выше, тем выше уровень поглощения. Этот способ
определения сатурации отличается высокой точностью результата и
возможностью его использования и в стационаре, и амбулаторно.
Методика работы. Устанавливают датчик на палец. Включают
аппарат, после чего начинается процесс измерения, который длится 20‒
30 с. Результат измерений фиксируется на мониторе прибора.
Результаты. Записать полученный результат.
Выводы:
1. Дать определение оксигемометрии.
2. Сравнить полученные результаты с нормой.
Работа 4. Определение пиковой скорости выдоха (ПСВ) методом пикфлуометрии.
Для работы необходимо: пикфлуометр.
Методика работы. Пиковая скорость выдоха – это показатель
того, насколько быстро человек может выдохнуть воздух из легких в
прибор. Низкий показатель говорит о сужении дыхательных путей.
Встать прямо. Сдвинуть индикатор к нижней части шкалы, к
мундштуку. Держите устройство перед собой. Вдохните как можно
глубже. Задержите дыхание, возьмите в рот мундштук устройства,
плотно обхватите его губами.
Не наклонять голову. Сохранять вертикальное положение.
65
Сделать максимально сильный и быстрый выдох внутрь прибора. Пиковая скорость выдоха отражается на шкале прибора.
Провести измерение три раза. Итоговое значение – максимальное из трех показаний.
Результаты. Записать результаты исследования.
Выводы:
1. Записать полученный результат.
2. Что отражают статические и динамические легочные объемы?
6.2. Регуляция дыхания.
Функциональная система дыхания
Цель. Изучить механизмы регуляции дыхания и принципы организации функциональной системы дыхания.
Теоретические вопросы
1. Дыхательный центр. Отделы дыхательного центра и их
функции: бульбопонтийный, спинномозговой, гипоталамический,
корковый.
2. Современные представления о механизме периодичности
дыхания: генератор центрального инспираторного возбуждения,
механизм выключения инспирации, механизмы плавной смены
вдоха и выдоха: пневмотаксический центр, рефлексы с механорецепторов легких.
3. Рефлекторные влияния на дыхание с рецепторов легких, воздухоносных путей, дыхательных мышц. Хеморецепторы и их роль в
регуляции дыхания. Артериальные и центральные хеморецепторы.
4. Защитные реакции дыхательной системы: реснично-слизистый эскалатор, лимфатический дренаж, эндоцитоз, защитные рефлексы. Роль ирритантных рецепторов.
5. Функциональная система поддержания газового состава
крови. Резервы дыхательного процесса. Дыхание и газообмен при деятельных состояниях.
66
Практические работы
1. Функциональные пробы с задержкой дыхания.
2. Пневмография при различных физиологических состояниях
человека.
Методические рекомендации
к практическим работам
Работа 1. Функциональные пробы с задержкой дыхания.
Для работы необходимо: секундомер.
Методика работы. 1. Задержка дыхания на вдохе ‒ проба
Штанге. Перед началом работы сделать три дыхательных движения
на 2/3 глубины полного вдоха. Затем сделать максимально глубокий
вдох и задержать дыхание как можно дольше, зажав нос пальцами.
Время задержки отметить по секундомеру.
2. Задержка дыхания на выдохе ‒ проба Генча. Проводится
также как проба Штанге, только после максимально глубокого выдоха. Работу выполняет каждый студент, вносит свои результаты
в протокол.
Результаты. Записать время задержки дыхания на вдохе и выдохе.
Выводы:
1. Полученные результаты сравнить с нормой. Норма для
пробы Штанге – 40–50 с, для пробы Генча – 20–30 с.
2. С чем связана разница в длительности задержки дыхания на
вдохе и выдохе?
3. Что оценивают эти пробы?
Работа 2. Пневмография при различных физиологических состояниях человека.
Дыхательный цикл состоит из двух фаз, следующих друг за
другом без пауз ‒ фазы вдоха и фазы выдоха. Регистрация дыхательных движений грудной клетки (пневмография) основана на принципе воздушной передачи дыхательных движений грудной клетки
пишущему устройству. Получаемая запись – пневмограмма, позволяет судить о продолжительности фаз дыхания, частоте дыхания,
67
глубине и зависимости этих показателей от физиологического состояния организма (покоя, работы и т.д.).
Наиболее употребляемый пневмограф представляет собой продолговатую резиновую камеру, помещенную в матерчатый чехол,
герметически соединенную с регистрационной капсулой.
Для работы необходимо: пневмоманжета, резиновые трубки,
тройник, зажим, усилитель и самописец.
Методика работы. Резиновую камеру (манжету) укрепляют
на самой подвижной части грудной клетки испытуемого, предварительно заполнив всю систему воздухом через тройник. Устанавливают капсулу, необходимое усиление (размах стрелки 2–3 см) и записывают со скоростью 2,5 мм/с пневмограмму при следующих
условиях: а) спокойное дыхание; б) глубокое дыхание и его последствия; в) дыхание после физической нагрузки (10–12 приседаний);
г) задержка дыхания и ее последствия; д) частое поверхностное дыхание (увеличивают скорость записи до 10 мм/с и регистрируют дыхание); е) во время декламации (чтения); ж) при кашле; з) глотании.
Результаты. Вклейте или зарисуйте полученные пневмограммы в тетрадь и проведите их анализ.
Выводы:
1. Объясните механизм изменения дыхания при каждом изменении условия исследования.
2. Функцию каких отделов дыхательного центра можно характеризовать по результатам пневмографии, записанных в пунктах а‒з?
68
ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ
Выберите один или несколько правильных вариантов ответа
Общая физиология возбудимых тканей
1. ПОРОГ РАЗДРАЖЕНИЯ ПОЗВОЛЯЕТ ОЦЕНИТЬ
а) проводимость ткани
б) силу тормозного процесса
в) силу возбудительного процесса
г) возбудимость
д) лабильность
2. РАЗНОСТЬ КОНЦЕНТРАЦИЙ НАТРИЯ
ВНУТРИ И СНАРУЖИ КЛЕТКИ ПОДДЕРЖИВАЕТ
а) натрий-калиевый насос
б) селективный калиевый канал
в) селективный натриевый канал
г) мембранный потенциал
д) потенциал действия
И
КАЛИЯ
3. ПОТЕНЦИАЛОМ ПОКОЯ НАЗЫВАЮТ
а) заряд внутренней стороны мембраны клетки
б) разность зарядов между наружной и внутренней стороной
мембраны клетки в покое
в) заряд наружной стороны мембраны клетки
г) разность потенциалов между соседними участками возбудимой ткани
4. ДЕПОЛЯРИЗАЦИЯ МЕМБРАНЫ ВОЗБУДИМОЙ КЛЕТКИ
СВЯЗАНА С ПОВЫШЕНИЕМ ПРОНИЦАЕМОСТИ ДЛЯ ИОНОВ
а) хлора
б) калия
в) натрия
г) кальция
69
5. КРИТИЧЕСКИМ УРОВНЕМ МЕМБРАННОГО ПОТЕНЦИАЛА НАЗЫВАЮТ
а) такое значение мембранного потенциала, при котором деполяризация сменяется реполяризацией
б) такой заряд мембраны, при достижении которого открываются потенциал-зависимые каналы для калия
в) такой заряд мембраны, при котором открываются хемочувствительные каналы для ионов натрия
г) такое значение мембранного потенциала, при котором открываются потенциал-зависимые каналы для ионов натрия
6. ПОТЕНЦИАЛОМ ДЕЙСТВИЯ НАЗЫВАЮТ
а) колебания потенциала покоя в ответ на действие подпороговых раздражителей
б) быстрые колебания мембранного потенциала в ответ на действие пороговых и сверхпороговых раздражителей
в) разность потенциалов между возбужденным и невозбужденным участками мембраны клетки
г) изменения мембранного потенциала, не достигающие критического уровня мембранного потенциала
д) электрический раздражитель, действующий на ткань и вызывающий ее ответ
7. ТЕОРИЯ МЫШЕЧНОГО СОКРАЩЕНИЯ НАЗЫВАЕТСЯ
а) теорией электрической диссоциации
б) теорией укорочения мышцы
в) теорией скольжения
г) теорией наложения мышечных сокращений
д) мембранно-ионной теорией
8. СОПРЯЖЕНИЕ ПРОЦЕССА ВОЗБУЖДЕНИЯ МЕМБРАНЫ
МЫШЕЧНОГО ВОЛОКНА И ЕГО СОКРАЩЕНИЯ ОБЕСПЕЧИВАЮТ
а) ионы калия
б) ионы кальция
в) ионы натрия
г) тропонин
д) тропомиозин
70
9. МЕДИАТОР ИЗ НЕРВНОГО ОКОНЧАНИЯ ВЫДЕЛЯЕТСЯ, ЕСЛИ
а) освобождаются постсинаптические рецепторы
б) отмечается высокая активность ферментов синаптической щели
в) кальций входит в нервное окончание
г) натрий входит в нервное окончание
д) калий выходит из нервного окончания
10. НА ПОСТСИНАПТИЧЕСКОЙ МЕМБРАНЕ ТОРМОЗНОГО СИНАПСА ВОЗНИКАЕТ
а) деполяризация
б) реполяризация
в) тормозной потенциал действия
г) возбуждающий постсинаптический потенциал
д) тормозной постсинаптический потенциал
Общая физиология ЦНС
11. ВОЗБУЖДЕНИЕ ПО РЕФЛЕКТОРНОЙ ДУГЕ РАСПРОСТРАНЯЕТСЯ
а) от эфферентного нейрона через интернейроны к афферентному
б) от интернейронов через эфферентный нейрон к афферентному
в) от интернейронов через афферентный нейрон к эфферентному
г) от афферентного нейрона через интернейроны к эфферентному
12. МОНОСИНАПТИЧЕСКАЯ РЕФЛЕКТОРНАЯ ДУГА ОБРАЗОВАНА НЕЙРОНАМИ
а) чувствительным и двигательным
б) чувствительным, вставочным и двигательным
в) вставочным и двигательным
г) чувствительным и вставочным
71
13. ОДИН МОТОНЕЙРОН МОЖЕТ ПОЛУЧАТЬ ИМПУЛЬСЫ
ОТ НЕСКОЛЬКИХ АФФЕРЕНТНЫХ НЕЙРОНОВ БЛАГОДАРЯ
а) афферентному синтезу
б) пространственной суммации
в) конвергенции
г) дивергенции
14. ПРИ ДЛИТЕЛЬНОМ РАЗДРАЖЕНИИ РЕЦЕПТОРОВ
РЕФЛЕКТОРНЫЙ ОТВЕТ ПРЕКРАЩАЕТСЯ ИЗ-ЗА РАЗВИТИЯ
УТОМЛЕНИЯ В ПЕРВУЮ ОЧЕРЕДЬ
а) в рецепторе
б) афферентных волокнах
в) эфферентных волокнах
г) периферическом синапсе
д) центральном синапсе
15. РОЛЬ ВОЗВРАТНОГО ТОРМОЖЕНИЯ ЗАКЛЮЧАЕТСЯ
а) в защите нейрона от перевозбуждения
б) обеспечении согласованной работы мышц-антагонистов
в) обеспечении иррадиации возбуждения
г) усилении деятельности нейрона
16. РОЛЬ СИНАПСОВ В ЦНС ЗАКЛЮЧАЕТСЯ В ТОМ,
ЧТО ОНИ
а) являются местом возникновения потенциала действия
б) формирует потенциал покоя нейрона
в) обеспечивает одностороннее проведение возбуждения по рефлекторной дуге
г) передают токи покоя
д) препятствуют иррадиации возбуждения в ЦНС
17. ВОЗБУЖДЕНИЕ РЕЦЕПТОРОВ ГОЛЬДЖИ ПРИВЕДЕТ
а) к сокращению экстрафузальных мышечных волокон
б) расслаблению экстрафузальных мышечных волокон
в) сокращению интрафузальных мышечных волокон
г) расслаблению интрафузальных мышечных волокон
72
18. ПРОСТРАНСТВЕННОЙ СУММАЦИЕЙ В ЦНС НАЗЫВАЮТ
а) суммацию потенциалов действия, возникающих в разных
нейронах нервного центра
б) суммацию медиатора в одном синапсе при его возбуждении
в) суммацию раздражителей, действующих на различные рецепторы одного рецептивного поля
г) суммацию ВПСП, возникающих в различных синапсах одного нейрона
д) суммацию потенциалов действия, приходящих к нейрону по
различным афферентным путям
19. ПРИ ФИЗИЧЕСКОЙ РАБОТЕ ЦЕНТРЫ МЫШЦ-АНТАГОНИСТОВ ОДНОВРЕМЕННО НАХОДЯТСЯ В СОСТОЯНИИ
а) реципрокного торможения
б) пресинаптического торможения
в) латерального торможения
г) возбуждения
д) возвратного торможения
20. В ОСНОВЕ ПОСТСИНАПТИЧЕСКОГО ТОРМОЖЕНИЯ
ЛЕЖИТ
а) деполяризация пресинаптической терминали
б) уменьшение выделения медиатора в синапсе
г) гиперполяризация постсинаптической мембраны
д) нарушение механизмов временной суммации ВПСП
Частная физиология ЦНС
21. К ЛОКОМОЦИЯМ ОТНОСЯТСЯ
а) ходьба, бег
б) мимика, жесты, речь
в) танец, прыжки
г) рабочие движения
73
22. СЕНСОРНЫЙ ОТДЕЛ СОМАТИЧЕСКОЙ СИСТЕМЫ
ВКЛЮЧАЕТ
а) рецепторы
б) проводящие пути
в) вегетативные ганглии
г) нервные центры
23. К ИНТЕРОРЕЦЕПТОРАМ ОТНОСЯТСЯ
а) зрительные и слуховые рецепторы
б) кожные рецепторы
в) проприорецепторы
24. ТАЛАМУС ‒ ЭТО
а) подкорковый центр чувствительности
б) подкорковый центр боли
в) передает моторную информацию от базальных ганглиев
и мозжечка к моторной коре
25. ЦЕНТР КОЛЕННОГО РЕФЛЕКСА РАСПОЛОЖЕН
а) в Th 8–Th 12
б) С5–С6
в) S1–S2
г) L2–L4
26. МЫШЦЫ ГЛАЗА КОНТРОЛИРУЮТ
а) III, V, VI пары ЧМН
б) III, IV, VII пары ЧМН
в) III, IV, VI пары ЧМН
г) IV, V, VI пары ЧМН
27. К СТАТИЧЕСКИМ РЕФЛЕКСАМ ОТНОСЯТСЯ
а) нистагм
б) лабиринтный
в) выпрямительный
г) шейный
74
28. РЕТИКУЛЯРНАЯ ФОРМАЦИЯ УЧАСТВУЕТ В РЕГУЛЯЦИИ
а) тонуса мышц
б) вегетативных функций
в) бодрствования и сна
г) функций гипоталамуса
29. К СИМПТОМАМ ПОРАЖЕНИЯ МОЗЖЕЧКА ОТНОСЯТСЯ
а) дрожательный паралич
б) тремор при движении
в) атаксия
г) нистагм
д) скандированная речь
30. «ЭМОЦИОНАЛЬНАЯ ТУПОСТЬ», ГИПОДИНАМИЯ –
ЭТО СИМПТОМЫ ПОРАЖЕНИЯ
а) полосатого тела
б) хвостатого ядра
в) черной субстанции
г) бледного шара
Автономная нервная система. Гормональная регуляция
31. ГИПОТАЛАМУС ЯВЛЯЕТСЯ
а) центром регуляции мышечной активности при движении
б) надсегментарным отделом автономной нервной системы
в) регулятором образования вторичных посредников
г) сегментарным отделом симпатической нервной системы
32. ПРИ РАЗДРАЖЕНИИ ПАРАСИМПАТИЧЕСКИХ НЕРВОВ
а) зрачки суживаются, бронхи расширяются, частота и сила
сердечных сокращений уменьшается, движения желудка и кишечника ослабляются (тормозятся), усиливается секреция желез желудка, поджелудочной железы
75
б) зрачки расширяются, частота и сила сердечных сокращений
увеличивается, бронхи расширяются, движения желудка и кишечника ослабляются (тормозятся), секреция желез желудка и поджелудочной железы тормозятся
в) зрачки суживаются, частота и сила сердечных сокращений
уменьшается, бронхи суживаются, усиливается перистальтика кишечника, усиливается секреция желез желудка и поджелудочной железы
33. К ХОЛИНЕРГИЧЕСКИМ НЕРВНЫМ ВОЛОКНАМ АВТОНОМНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ ОТНОСЯТСЯ
а) преганглионарные симпатические и парасимпатические, постганглионарные парасимпатические и симпатические, иннервирующие потовые железы и сосуды скелетных мышц
б) преганглионарные симпатические и постганглионарные
симпатические (все)
в) преганглионарные симпатические и постганглионарные
симпатические, иннервирующие мышцы радужной оболочки глаза
г) преганглионарные парасимпатические и постганглионарные
симпатические, иннервирующие мышцу сердца
34. ПЕРЕДАЧА ВОЗБУЖДЕНИЯ В
ГАНГЛИИ ОСУЩЕСТВЛЯЕТСЯ
а) электрическим способом
б) с помощью медиатора ацетилхолина
в) с помощью медиатора норадреналина
г) с помощью адреналина
д) с помощью холина
ВЕГЕТАТИВНОМ
35. ВТОРИЧНЫМИ ПОСРЕДНИКАМИ ЯВЛЯЮТСЯ
а) ацетилхолин и фосфолипаза С
б) цАМФ, цГМФ, инозитол-три-фосфат, Са
в) магний, натрий, АТФ
г) фосфолипиды, норадреналин и адреналин
76
36. ГОРМОНАМИ ПЕРЕДНЕЙ ДОЛИ ГИПОФИЗА ЯВЛЯЮТСЯ
а) либерины, статины
б) окситоцин, вазопрессин, глюкокортикоиды
в) адренокортикотропный гормон, соматотропный, тиреотропный, гонадотропный
г) адреналин, норадреналин, серотонин
д) тироксин, натрийуретический, глюкагон
37. ПРИ ИЗБЫТКЕ ИНСУЛИНА СОДЕРЖАНИЕ ГЛИКОГЕНА В МЫШЦАХ
а) увеличивается
б) уменьшается
в) не изменяется
38. ГОРМОН, РЕГУЛИРУЮЩИЙ ВЫДЕЛЕНИЕ ГЛЮКОКОРТИКОИДОВ
а) окситоцин
б) пролактин
в) лютеинизирующий
г) адренокортикотропный
39. ГЛЮКОНЕОГЕНЕЗ КОНТРОЛИРУЕТ ГОРМОН
а) кортикостерон
б) пролактин
в) лютеинизирующий
г) адренокортикотропный
40. ПРИ ПОВЫШЕНИИ ОСМОТИЧЕСКОГО ДАВЛЕНИЯ
КРОВИ
а) увеличивается выработка антидиуретического гормона
б) уменьшается выработка антидиуретического гормона
в) формируется солевой аппетит
г) уменьшается выработка натрийуретического гормона
77
Кровь
41. ЧАСТЬ ОБЪЕМА КРОВИ, ПРИХОДЯЩАЯСЯ НА ФОРМЕННЫЕ ЭЛЕМЕНТЫ, НАЗЫВАЕТСЯ
а) плотным остатком
б) центрифугатом
в) цветовым показателем
г) гематокритом
д) лейкоцитарной массой
42. КАКАЯ ЖИДКОСТЬ СООТВЕТСТВУЕТ ПО СОСТАВУ
НОРМАЛЬНОЙ ПЛАЗМЕ КРОВИ?
а)
б)
в)
Вода
92 %
90 %
91 %
Белки
7%
8%
8%
Ионы
0,9 %
2%
0,1 %
43. СКОРОСТЬ ОСЕДАНИЯ ЭРИТРОЦИТОВ ЗАВИСИТ
а) от осмотического давления плазмы крови
б) рН крови
в) белкового состава плазмы
г) температуры крови
д) наличия ионов кальция
44. НАИБОЛЬШЕЙ БУФЕРНОЙ ЕМКОСТЬЮ ОБЛАДАЕТ
БУФЕРНАЯ СИСТЕМА КРОВИ
а) карбонатная
б) фосфатная
в) гемоглобиновая
г) белковая
45. ЩЕЛОЧНЫЕ СОЛИ СЛАБЫХ КИСЛОТ, СОДЕРЖАЩИЕСЯ В КРОВИ, ОБРАЗУЮТ
а) бикарбонатный барьер
б) щелочной резерв крови
в) кислотно-щелочное равновесие
г) онкотическое давление
78
46. КАКИЕ ГАЗЫ ТРАНСПОРТИРУЮТСЯ ЭРИТРОЦИТОМ
В НОРМЕ?
а) О2 и СО2
б) О2, СО2 и СО
в) О2, СО2 и N2
47. ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЙ ЭРИТРОЦИТОЗ ВОЗНИКАЕТ
а) при физической нагрузке
б) во время сна
в) при умственной нагрузке
г) при переутомлении
48. В КАКИЕ КЛЕТКИ ПРЕВРАЩАЮТСЯ В-ЛИМФОЦИТЫ?
а) в макрофаги и чужеродные клетки
б) в плазматические клетки и клетки памяти
г) в антигены
49. КЛЕТОЧНЫЕ ФАКТОРЫ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ ЗАЩИТЫ ОБЛАДАЮТ СЛЕДУЮЩИМИ СВОЙСТВАМИ
а) адгезия и агрегация
б) хемотаксис и фагоцитоз
в) иммунокомпетентность
50. СВЕРТЫВАНИЮ КРОВИ СПОСОБСТВУЮТ
а) ионы калия и натрия
б) ионы кальция и плазмин
в) ионы кальция и протромбин
г) гепарин и фибриноген
Выделение
51. ПОТЕРЯ 25 % ВОДЫ ОРГАНИЗМОМ ПРИВОДИТ
а) к обратимым изменениям
б) может привести к гибели
в) не ощущается
79
52. ПРИ ПОВЫШЕНИИ ВНУТРИПОЧЕЧНОГО ДАВЛЕНИЯ
ПРОЦЕСС ФИЛЬТРАЦИИ МОЧИ
а) усиливается
б) ослабляется
в) не изменяется
53. ФИЛЬТРАЦИИ В КАПСУЛЕ ШУМЛЯНСКОГО–БОУМЕНА СПОСОБСТВУЕТ
а) онкотическое давление плазмы крови
б) гидростатическое давление в капиллярах клубочка
в) внутрипочечное давление
г) содержание глюкозы в плазме крови
д) содержание натрия в плазме крови
54. В ПЕТЛЕ ГЕНЛЕ ПРОИСХОДИТ
а) активная реабсорбция ионов натрия, пассивная реабсорбция воды
б) пассивная реабсорбция ионов натрия, активная реабсорбция воды
в) активная реабсорбция ионов натрия, активная реабсорбция воды
55. НАТРИЙУРЕТИЧЕСКИЙ ГОРМОН
а) вырабатывается в предсердиях, снижает реабсорбцию
натрия в почках, блокирует действие ренин-ангиотензин-альдостероновой системы, увеличивает количество вторичной мочи
б) вырабатывается в гипоталамусе, увеличивает реабсорбцию
натрия в почках, блокирует действие ренин-ангиотензин-альдостероновой системы, уменьшает количество вторичной мочи
в) вырабатывается в предсердиях, снижает реабсорбцию
натрия в почках, усиливает действие ренина, уменьшает количество
вторичной мочи
56. РЕНИН
а) вырабатывается в почках, выделяется при понижении почечного кровотока, способствует выделению альдостерона
80
б) вырабатывается в гипоталамусе, выделяется при увеличении
объема циркулирующей крови, способствует выделению натрийуретического гормона
в) вырабатывается в почках, выделяется при увеличении объема циркулирующей крови, способствует выделению натрийуретического гормона
57. ПОЧКА УЧАСТВУЕТ В РЕГУЛЯЦИИ рН КРОВИ ПУТЕМ
а) повышения канальцевой секреции мочевины
б) выработки ренина
в) секреции ионов водорода
г) изменения реабсорбции натрия
58. ПОЧКИ УЧАСТВУЮТ В ПОДДЕРЖАНИИ СЛЕДУЮЩИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ
а) рН, температуры, парциального напряжения кислорода
б) рН, артериального давления, осмотического давления
в) вязкости, онкотического давления
г) осмотического давления, содержания сахара в крови, количества лейкоцитов
59. ПРИ ДЕФИЦИТЕ ВОДЫ НЕОБХОДИМО
а) суточный запас воды разделить на порции по 80–100 мл
б) одновременно выпивать до 1 л воды
в) не нормировать прием воды
60. МЕХАНИЗМ АКТА МОЧЕИСПУСКАНИЯ
а) рефлекторный, вызывается раздражением рецепторов мочевого пузыря, стенок сфинктера мочеиспускательного канала, обеспечивается парасимпатической нервной системой, центр рефлекса мочеиспускания находится в крестцовых сегментах спинного мозга
б) рефлекторный, вызывается раздражением рецепторов мочевого пузыря, и стенок, и стенок сфинктера мочеиспускательного канала, центр рефлекса мочеиспускания находится в I–II поясничных
81
сегментах спинного мозга, обеспечивается симпатической нервной
системой
в) рефлекторный, вызывается раздражением рецепторов мочевого пузыря, и стенок сфинктера мочеиспускательного канала, центр
рефлекса мочеиспускания находится в поясничном и крестцовом отделах спинного мозга, обеспечивается соматической нервной системой
Дыхание
61. ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ЭТАПОВ ДЫХАНИЯ
а) вентиляция легких, газообмен в легких, транспорт газов кровью, газообмен в тканях, тканевое дыхание
б) газообмен в легких, вентиляция легких, газообмен в тканях,
тканевое дыхание, транспорт газов кровью
в) вентиляция легких, газообмен в тканях, тканевое дыхание,
транспорт газов кровью, газообмен в легких
62. ДИССОЦИАЦИЯ ОКСИГЕМОГЛОБИНА В КРОВИ
УВЕЛИЧИВАЕТСЯ ПРИ
а) снижении парциального напряжения кислорода, увеличении
концентрации ионов водорода, уменьшении рН крови, повышении
температуры, увеличении парциального напряжения СО2, увеличении содержания 2,3-дифосфоглицерата в эритроцитах
б) увеличении парциального напряжения кислорода, уменьшении парциального напряжения СО2 в крови, увеличении рН крови,
понижении температуры
в) увеличении концентрации ионов водорода, увеличении рН
крови, уменьшении содержания 2,3-дифосфоглицерата в эритроцитах, увеличении парциального напряжения кислорода
63. СПОКОЙНЫЙ ВДОХ ОСУЩЕСТВЛЯЕТСЯ ЗА СЧЕТ
СОКРАЩЕНИЯ МЫШЦ
а) наружных межреберных, межхрящевых, диафрагмы
б) внутренних межреберных, диафрагмы, передней брюшной стенки
в) диафрагмы, лестничных, мышц, сгибающих позвоночник
82
64. ДИФФУЗИЯ КИСЛОРОДА В ЛЕГКИХ ПРОИСХОДИТ
ВСЛЕДСТВИЕ РАЗНОСТИ
а) парциального давления кислорода и углекислого газа в альвеолярном воздухе
б) парциального давления кислорода в альвеолярном воздухе и
парциального напряжения его в крови
в) давление газа в альвеолярном воздухе и плевральной полости
г) парциального напряжения кислорода в артериальной и венозной крови
65. ИНСПИРАТОРНО-ТОРМОЗНОЙ РЕФЛЕКС ВОЗНИКАЕТ
а) с ирритантных механорецепторов
б) с механорецепторов дуги аорты и каротидного синуса
в) с механорецепторов легких при вдохе
66. АЛЬВЕОЛЫ ЛЕГКИХ НЕ СПАДАЮТСЯ ПОЛНОСТЬЮ
ПРИ ВЫДОХЕ, ТАК КАК ЭТОМУ ПРЕПЯТСТВУЕТ
а) высокое поверхностное натяжение альвеол
б) эластичность альвеол
в) сурфактант
67. В КАКИХ ТКАНЯХ, КРОМЕ КРОВИ, ИМЕЕТСЯ ДЕПО
КИСЛОРОДА?
а) в легких
б) в стенках органов желудочно-кишечного тракта
в) нет ни в каких
г) в скелетных и сердечной мышце
68. НЕЙРОНЫ,
КАКОГО
ОТДЕЛА
ЦЕНТРАЛЬНОЙ
НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ ЯВЛЯЮТСЯ ГЕНЕРАТОРОМ ДЫХАНИЯ?
КАК ОНИ НАЗЫВАЮТСЯ?
а) пейсмекеры коры больших полушарий
б) гипоталамуса, интернейроны
в) варолиевого моста, экспираторные нейроны
г) инспираторные нейроны продолговатого мозга
83
69. КАК ОТРАЗИТСЯ НА ДЫХАНИИ ДВУСТОРОННЯЯ
ПЕРЕРЕЗКА БЛУЖДАЮЩИХ НЕРВОВ?
а) дыхание станет поверхностным и частым
б) произойдет задержка дыхания
в) дыхание станет редким и глубоким
г) дыхание прекратится
д) дыхание не изменится
70. НАЗОВИТЕ ОСНОВНОЕ НАЗНАЧЕНИЕ ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ СИСТЕМЫ РЕГУЛЯЦИИ ДЫХАНИЯ
а) поддержание необходимого уровня кислорода в клетках организма
б) поддержание оптимального газового состава артериальной крови
в) поддержание уровня кислорода и углекислого газа в альвеолах
г) поддержание потребления кислорода клетками организма
д) поддержание частоты и глубины дыхания
е) поддержание постоянной вентиляции
ОТВЕТЫ НА ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ
1–г
2–а
3–б
4–в
5–г
6–б
7–в
8–б
9–в
10 – д
84
11 – г
12 – а
13 – в
14 – д
15 – а
16 – в
17 – б
18 – г
19 – а
20 – г
21 – а, в, г
22 – а, б, г
23 – в
24 – а, б, в
25 – г
26 – в
27 – б, в, г
28 – а, б, в
29 – б, в, г, д
30 – г
31 – б
32 – в
33 – а
34 – б
35 – б
36 – в
37 – а
38 – г
39 – а
40 – а
41 – г
42 – а
43 – в
44 – в
45 – б
46 – а
47 – а
48 – б
49 – б
50 – в
51 – б
52 – б
53 – б
54 – а
55 – а
56 – а
57 – в
58 – б
59 – а
60 – а
61 – а
62 – а
63 – а
64 – б
65 – в
66 – в
67 – г
68 – г
69 – в
70 – б
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Орлов Р.С., Ноздрачёв А.Д. Нормальная физиология: учебник. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 696 с.
2. Нормальная физиология: учебник / под ред. А.В. Завьялова,
В.М. Смирнова. – М.: МЕДпресс-информ, 2009. – 816 с.
3. Нормальная физиология; учебник / под ред. Б.И. Ткаченко. –
3-е изд., испр. и доп. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2018. – 687 с.
4. Нормальная физиология: учебник / под ред. В.М. Смирнова. – 3-е изд., перераб. и доп. – М.: Академия, 2010. – 480 с.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ЛИТЕРАТУРА
85
Страница кафедры
нормальной физиологии
в социальной сети «ВКонтакте»
Страница студенческого научного
сообщества (СНО) кафедры в социальной
сети «ВКонтакте»
86
ПРИЛОЖЕНИЕ 1
ПЕРЕЧЕНЬ ПРАКТИЧЕСКИХ УМЕНИЙ,
КОТОРЫМИ ДОЛЖЕН ОВЛАДЕТЬ СТУДЕНТ
В ПРОЦЕССЕ ПРАКТИЧЕСКИХ (ЛАБОРАТОРНЫХ)
ЗАНЯТИЙ В ОСЕННЕМ СЕМЕСТРЕ
1. Динамометрия. Определение силы сокращения мышц кисти. Расчет индекса относительной силы.
2. Методика исследования у человека рефлексов: сухожильных (коленный, ахиллов), Ашнера, зрачкового.
3. Хронорефлексометрия на примере исследования реципрокного торможения.
4. Определение группы крови с помощью цоликлонов. Определение резус-фактора.
5. Определение жизненной емкости легких методом спирометрии.
6. Анализ спирограммы: определение частоты дыхания в минуту, дыхательного объема, резервного объема вдоха и выдоха, жизненной емкости легких, минутного объема дыхания.
7. Пробы Штанге и Генча.
8. Определение количества гемоглобина гемометром Сали.
9. Подсчет эритроцитов в камере Горяева.
10. Расчет цветового показателя крови, СГЭ.
11. Подсчет лейкоцитов в камере Горяева.
12. Определение СОЭ.
13. Определение времени свертывания крови, длительности
кровотечения.
14. Определение осмотической резистентности эритроцитов.
15. Изучение состояния вестибулярного анализатора у человека (функциональная вращательная проба Барани).
87
ПРИЛОЖЕНИЕ 2
ТЕРМИНЫ И КОНСТАНТЫ
Возбудимые ткани
Возбудимость – способность ткани реагировать на раздражение возбуждением (т.е. генерацией потенциала действия).
Проводимость – способность ткани передавать потенциал действия из одной точки в другую.
Сократимость – способность ткани сокращаться, т.е. менять
геометрию или тонус.
Автоматия – способность самовозбуждаться, т.е. генерировать потенциал действия без раздражения.
Порог раздражения – минимальная сила раздражителя, способная вызвать возбуждение ткани.
Хронаксия – минимальное время раздражителя, равное удвоенной реобазе (порогу силы), способного вызвать возбуждение ткани.
Порог возбуждения – разность между КУМП и потенциалом покоя.
Лабильность – функциональная подвижность, максимальное
количество потенциалов действия, которое может воспроизвести
ткань в единицу времени.
Потенциал покоя – поляризация мембраны клетки в покое, заряд мембраны в покое.
Деполяризация – уменьшение уровня поляризации.
Реполяризация – восстановление исходного уровня поляризации.
Гиперполяризация – увеличение уровня поляризации.
Локальный ответ – местное изменение уровня поляризации
мембраны.
Потенциал действия – импульс, импульсный ответ – общая деполяризация мембраны.
Парабиоз – состояние «около жизни», обратимое, характеризуется снижением возбудимости тканей.
88
Ионная селективность мембраны – избирательная проницаемость для ионов.
Ионный градиент – разница концентраций ионов по обе стороны мембраны.
Изометрическое сокращение – сокращение, при котором
длина мышцы не меняется, тонус увеличивается.
Изотоническое сокращение – мышца укорачивается, тонус не
изменяется.
Ритмические сокращения – чередование сокращения и расслабления.
Тонические сокращения – длительные сокращения.
Тетанус – длительное, сильное сокращение, полученное в результате суммации одиночных сокращений.
Суммация сокращений – сложение сокращений
Т-система – совокупность поперечных трубочек и цистерн ретикулума.
Электромеханическое сопряжение – связь потенциала действия и актомиозинового комплекса (осуществляется кальцием).
Саркомер – участок мышечной клетки между двумя z- мембранами, структурная и функциональная единица.
Нейромоторная единица – совокупность миоцитов и нейрона,
который их иннервирует.
Электромиография – регистрация биоэлектрических явлений
в мышцах.
Нейрон – нервная клетка.
Аксонный холмик – начальный отдел аксона, где возникает потенциал действия.
Рецептор – окончание дендрита чувствительного нейрона.
Афферентный нейрон – чувствительный.
Эфферентный нейрон – двигательный или вегетативный.
Синапс – контакт между двумя возбудимыми клетками для передачи информации.
Нервная терминаль – нервное окончание, на нем располагается пресинаптическая мембрана.
89
Медиатор – вещество, с помощью которого осуществляется
синаптическая передача, находится в пресинаптической мембране.
Рецепторы постсинаптической мембраны – белки, чувствительные к действию медиатора.
Модуляция синаптической передачи – ее изменение.
ВПСП – возбуждающий постсинаптический потенциал (деполяризация).
ТПСП – тормозной постсинаптический потенциал (гиперполяризация).
ПКП – потенциал концевой пластинки, возникает в нервно-мышечном синапсе (деполяризация).
Величина потенциала покоя:
‒ в волокнах скелетных мышц ‒ 60–90 мВ;
‒ в нервных клетках ‒ 50–80 мВ;
‒ в гладких мышцах – 30–70 мВ;
‒ в сердечной мышце ‒ 80–90 мВ.
ЦНС
Рефлекс – ответная реакция органа на раздражение из внешней
или внутренней среды организма.
Время рефлекса – время от начала действия раздражителя до
ответной реакции.
Латентный период – время от начала действия раздражителя
до начала ответной реакции
Рефлекторная дуга – структурная основа рефлекса, состоит из
нейронов, по которым сигнал проводится от рецептора к исполнительному органу
Афферентный нейрон – сенсорный, чувствительный.
Эфферентный нейрон – эффекторный, двигательный или вегетативный.
Соматический рефлекс – обеспечивается скелетными мышцами.
Вегетативный рефлекс – рефлекс с участием внутренних органов.
Возбуждение в нервном центре – процесс генерации потенциалов действия в нервном центре.
90
Сила рефлекса – его выраженность.
Торможение в нервном центре – активный нервный процесс,
при котором подавляется другое возбуждение.
Конвергенция – схождение импульсов к одному центру.
Дивергенция – расхождение импульсов от одного центра к другим.
Трансформация ритма – изменение частоты ритма.
Синаптическая депрессия – ослабление синаптической передачи, наблюдается при утомлении в синапсе.
Доминанта – преобладающий центр, подавляющий другие
центры.
Прямая связь – распространение импульсов из нервного центра к органу, или из высшего центра к низшему.
Обратная связь – распространение импульсов от органа в
нервный центр, или от нижележащего центра к вышележащему.
Принцип реципрокности – правило функционирования нервной системы, при котором центры находятся в таком взаимодействии, когда один возбужден, а другой заторможен (например, центры мышц-антагонистов.)
Ганглий – скопление тел нейронов вне ЦНС.
Ядро – скопление тел нейронов в ЦНС.
Автономная нервная система
Преганлионарное волокно – отросток первого нейрона, который расположен в ЦНС.
Постганглионарное волокно – отросток второго нейрона, расположенного в ганглии.
Сегментарные центры – расположены в стволе мозга (ядра
ЧМН) и в спинном мозге, контролируют определенные органы.
Сегмент спинного мозга – его участок с передними и задними
корешками.
Висцеральный рефлекс – вегетативный, осуществляется внутренним органом.
Экстерорецепторы – воспринимают раздражение из внешней среды.
91
Интерорецепторы – воспринимают раздражение из внутренней среды.
Проприорецепторы – соматорецепторы, расположены в мышцах и сухожилиях (мышечные веретена и рецепторы Гольджи).
Висцерорецепторы – расположены во внутренних органах.
Эрготропный отдел гипоталамуса (ЭТО) – задняя группа
ядер, родственный расходу энергии, связан с сегментарными симпатическими центрами.
Трофотропный отдел гипоталамуса (ТТО) – передняя группа
ядер гипоталамуса, родственный питанию (трофике), связан с сегментарными парасимпатическими центрами.
Метасимпатическая система – комплекс микроганглиев, расположенных в стенке органов, обеспечивающих его автоматию.
Двигательная система
Статические рефлексы – разновидность тонических рефлексов, которые возникают в покое: позные и выпрямительные.
Статокинетические рефлексы – разновидность тонических
рефлексов, которые возникают при движении (при ускоренном
движении).
Тонус мышц – постоянное сокращение мышц, обеспечиваемое
тонусом нервных центров.
Нистагм глаз – быстрые движения глаз после вращения.
Альфа-мотонейроны иннервируют экстрафузальные мышечные волокна (т.е. волокна самой мышцы).
Гамма-мотонейроны иннервируют интрафузальные мышечные волокна (волокна мышечного веретена).
Сенсорный гомункулус – «чувствительный человечек», зоны
в задней центральной извилине коры больших полушарий, которые
получают и анализируют информацию от рецепторов определенных
частей тела.
Моторный гомункулус – «двигательный человечек», зоны в передней центральной извилине коры больших полушарий, которые
контролируют мышцы нашего организма.
92
Двигательная колонка – функциональное объединение нейронов шести слоев участка коры, контролирует мышцы одного сустава.
Децеребрационная ригидность – повышение тонуса всех
мышц-разгибателей в результате перерезки ствола мозга между средним мозгом и мостом.
Коммуникативные движения ‒ мимика, жесты, речь.
Кровь
Гомеостаз – постоянство внутренней среды организма.
Осмотическое давление – сила, которая заставляет переходить
молекулы растворителя из менее в более концентрированный раствор.
Онкотическое давление плазмы – сила, которая удерживает
молекулы воды в сосудистом русле.
рН – отрицательный десятичный логарифм концентрации водородных ионов (показатель степени, в которую нужно возвести основание 10, чтобы получить данное число).
Кислотно-щелочное равновесие – равенство концентраций
ионов водорода и гидроксила.
Гематокрит – отношение объема эритроцитов к объему плазмы.
Эритроцитоз – увеличение количества эритроцитов.
Эритропения – уменьшение количества эритроцитов.
Эритропоэз – образование эритроцитов.
Эритропоэтины – вещества, выделяемые почками при гипоксии, активируют эритропоэз.
Гемолиз – растворение оболочки эритроцитов.
Цоликлон – жидкость, содержащая антитела к агглютиногену.
Донор – человек, который отдает кровь.
Реципиент – человек, которому переливают кровь
Агглютинация – склеивание эритроцитов.
Агглютиноген – белок, на мембране эритроцита, определяющий группу крови.
Агглютинин – антитело плазмы к агглютиногену.
Иммунитет – способ обеспечения антигенного гомеостаза и
защиты организма от патогенов, имеющих антигенное строение.
93
Врожденный иммунитет – факторы неспецифической защиты.
Приобретенный, адаптивный иммунитет – факторы специфической защиты.
Фагоцитоз – поглощение одной клеткой другой.
Лейкоцитарная формула – процентное соотношение отдельных форм лейкоцитов.
Адгезия – прилипание клеток к поверхности.
Апоптоз – запрограммированная гибель клетки.
Киллинг – уничтожение чужеродного антигена.
Хемотаксис – движение клетки к определенным химическим
раздражителям или от них.
Хемоаттрактанты – вещества, вызывающие хемотаксис.
Цитокины – межклеточные медиаторы, обеспечивают взаимодействие клеток при иммунном ответе.
Антигены – тела и вещества, несущие признаки чужеродной
генетической информации.
Антитела – специфические вещества (иммуноглобулины), которые образуются при введении антигенов и нейтрализующие их.
Toll-подобные рецепторы обеспечивают врожденный иммунитет, это рецепторы фагоцитирующих клеток к патогенным микроорганизмам.
NK-клетки ‒ естественные киллеры, уничтожающие опухолевые клетки и инфицированные вирусами.
Кислородная емкость крови – максимальное количество кислорода, которое может присоединить гемоглобин, находящийся в
100 мл крови.
Гемостаз ‒ остановка кровотечения.
Гемокоагуляция – свертывание крови.
Фибринолиз – растворение тромба.
Ретракция тромба – уплотнение тромба.
Антикоагулянты – вещества, препятствующие свертыванию крови.
Свертывающая система крови – химические и физические
факторы, способствующие свертыванию крови.
Противосвертывающая система – химические и физические
факторы, препятствующие свертыванию крови.
94
Константы по теме «Кровь»
1. Количество крови в организме: 6–8 % от веса тела.
2. Плотность цельной крови:
– у мужчин – 1,053–1,058;
– у женщин – 1,057–1,060.
3. Состав плазмы: вода – 92 %; белки – 7 %; соли – 1 %.
4. Вязкость крови – 4,5; плазмы – 2,2.
5. Осмотическое давление:
– крови – 7,6 атм;
– пота – 7,2 атм;
– мочи – 7,2–25 атм.
6. Онкотическое давление плазмы – 25–30 мм рт. ст.
7. рН крови: артериальной – 7,40; венозной – 7,36.
8. Кислородная емкость крови (КЕК) – 19–20 % об.
9. Время свертывания крови: начало – 4 мин, конец – 8 мин.
10. Длительность кровотечения по Дюке – 2–4 мин.
Показатели крови
Показатель
Эритроциты (RBC), 1012/л
Гемоглобин (HGB/Нb), г/л
Гематокрит (HСT), %
Средний объем эритроцита (MCV), фл
Среднее содержание гемоглобина в эритроците (МCH), пг
Средняя концентрация гемоглобина в эритроците (МСНС), г/л
Ширина распределения эритроцитов по объему (RDW), %
Ретикулоциты (RET), % (или) (‰)
Лейкоциты (WBC), 109/л
Нейтрофилы (Neu), % (109/л)
палочкоядерные
сегментоядерные
Эозинофилы (Eos), % (109/л)
Базофилы (Bas), % (109/л)
Лимфоциты (Lym), % (109/л)
Моноциты (Mon), % (109/л)
Тромбоциты (PLT), 109/л
Средний объем тромбоцита (МPV), фл
Ширина распределения тромбоцитов по объему (PDW), %
Тромбокрит (PCT), %
СОЭ, мм/ч
Нормальные значения
Мужчины
Женщины
4,0–5,0
3,9–4,7
130–160
120–140
40–48
36–42
80–100
27–33
300–380
11,5–14,5
0,2–1,2 (2–12)
4,0–9,0
1–6 (0,04–0,3)
47–72 (2–5,5)
0,5–5 (0,02–0,3)
0–1 (0–0,065)
19–37 (1,2–3)
3–11 (0,09–0,6)
180–380
7,4–10,4
10–20
0,15–0,4
2–10
2–15
95
Дыхание
Дыхание – процесс газообмена между организмом и внешней средой.
Диффузия газов в легких – газообмен между альвеолярным воздухом и кровью.
Диффузия газов в тканях – газообмен между кровью и межклеточной жидкостью.
Вентиляция легких – газообмен между атмосферным воздухом
и альвеолярным.
Пневмоторакс – попадание воздуха в плевральную полость.
Сурфактант – вещество, вырабатываемое альвеолярными
клетками, стабилизирует поверхностное натяжение, препятствует
спадению альвеол.
Парциальное давление – часть общего давления газа в смеси в
зависимости от его количества.
Минутный объем дыхания (МОД) – объем воздуха, который
проходит через легкие за минуту.
Минутная альвеолярная вентиляция (МАВ) – количество воздуха, которое проходит через альвеолы за минуту.
Жизненная емкость легких (ЖЕЛ) – максимальное количество
воздуха, которое человек может выдохнуть после максимального вдоха.
Функциональная остаточная емкость (ФОЕ) – воздух, который остается в легких при спокойном дыхании.
Дыхательный объем (ДО) – объем воздуха, который можно
вдохнуть или выдохнуть при спокойном дыхании.
Резервный объем вдоха (РОвд) – максимальный объем воздуха,
который можно вдохнуть после спокойного вдоха.
Резервный объем выдоха (РОвыд) – максимальный объем воздуха, который можно выдохнуть после спокойного выдоха.
Остаточный объем (ОО) – объем воздуха, который остается
в легких после максимального выдоха.
Основные дыхательные мышцы – диафрагма, наружные межреберные.
96
Функциональный резерв дыхания – возможность увеличить
МОД при нагрузке (глубина и частота дыхания).
Гиперкапнический стимул – повышение напряжения СО2.
Гипоксический стимул – понижение напряжения О2.
Ацидотический стимул – понижение рН (увеличение концентрации ионов водорода).
Бульбопонтийный центр – находится в продолговатом мозге
и мосту.
Анатомическое мертвое пространство – объем воздуха, находящийся в гортани, трахее и бронхах.
Коэффициент утилизации кислорода (КУК) – показатель поглощения кислорода тканями.
97
Учебное издание
НОРМАЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
Учебно-методическое пособие
В двух частях
Часть 1
Булатова Ирина Анатольевна,
Кадырова Елена Васильевна,
Тютюнщикова Валентина Дмитриевна,
Кононова Маргарита Леонидовна,
Савкин Владимир Васильевич,
Кривцов Александр Владимирович,
Сагитова Татьяна Габильбековна,
Чистякова Ирина Викторовна
Редактор М . А . К а п у с т и н а
Подписано в печать 01.09.2025 г.
Формат 6090/16. Усл. печ. л. 6,1.
Тираж 100 экз. Заказ №
Центр публикационной активности
ФГБОУ ВО ПГМУ им. академика Е.А. Вагнера
Минздрава России
614990, г. Пермь, ул. Петропавловская, 27
Отпечатано
98